| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 英文缩略词中英文全称 | 第15-16页 |
| 第1章 前言 | 第16-37页 |
| 1.1 长牡蛎的简介 | 第16-18页 |
| 1.2 外套膜的功能及研究现状 | 第18-26页 |
| 1.2.1 贝壳的生物矿化 | 第19-20页 |
| 1.2.2 免疫作用 | 第20-23页 |
| 1.2.3 色素 | 第23-26页 |
| 1.2.4 神经传导 | 第26页 |
| 1.3 转录组技术 | 第26-29页 |
| 1.3.1 转录组测序概述 | 第26页 |
| 1.3.2 转录组测序在海洋贝类中的应用进展 | 第26-29页 |
| 1.4 蛋白质组学 | 第29-31页 |
| 1.4.1 蛋白质组学概述 | 第29-30页 |
| 1.4.2 蛋白质组学在海洋贝类中的应用 | 第30-31页 |
| 1.5 DNA甲基化技术在海洋生物中的研究现状 | 第31-32页 |
| 1.6 左右不对称发育 | 第32-33页 |
| 1.7 牡蛎附着功能的影响因素 | 第33-34页 |
| 1.8 研究的目的及意义 | 第34-35页 |
| 1.9 研究内容 | 第35-36页 |
| 1.10 技术路线 | 第36-37页 |
| 第2章 长牡蛎左右外套膜的蛋白质组学分析 | 第37-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第38-40页 |
| 2.1.1 材料与处理 | 第38页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第38页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第38-39页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第39-40页 |
| 2.2 结果与分析 | 第40-47页 |
| 2.2.1 附着斑、左右壳的蛋白质组学分析 | 第40-41页 |
| 2.2.2 左右外套膜的蛋白质组学分析 | 第41-47页 |
| 2.3 结论与讨论 | 第47-48页 |
| 第3章 长牡蛎左右外套膜的转录组测序及MethylRAD技术分析 | 第48-81页 |
| 3.1 材料与方法 | 第50-56页 |
| 3.1.1 材料与处理 | 第50页 |
| 3.1.2 试验试剂 | 第50页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第50-51页 |
| 3.1.4 试验方法 | 第51-56页 |
| 3.2 结果与分析 | 第56-79页 |
| 3.2.1 转录组学结果分析 | 第56-69页 |
| 3.2.2 DNA甲基化结果分析 | 第69-78页 |
| 3.2.3 定量荧光PCR结果分析 | 第78-79页 |
| 3.3 结论及讨论 | 第79-81页 |
| 第4章 钾离子通道在长牡蛎幼虫附着过程中的功能研究 | 第81-86页 |
| 4.1 材料与方法 | 第81-82页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第81页 |
| 4.1.2 试验试剂 | 第81-82页 |
| 4.1.3 试验设备 | 第82页 |
| 4.1.4 试验方法 | 第82页 |
| 4.2 结果与分析 | 第82-84页 |
| 4.2.1 钾离子对长牡蛎附着变态的影响 | 第83页 |
| 4.2.2 钾离子对长牡蛎附着变态的影响 | 第83-84页 |
| 4.2.3 添加钾离子通道抑制剂对长牡蛎附着变态的影响 | 第84页 |
| 4.3 结论及讨论 | 第84-86页 |
| 第5章 长牡蛎钙调蛋白基因全长cDNA的克隆和表征 | 第86-97页 |
| 5.1 材料与方法 | 第86-91页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第86-87页 |
| 5.1.2 试验试剂 | 第87-88页 |
| 5.1.3 设备与仪器 | 第88页 |
| 5.1.4 试验方法 | 第88-91页 |
| 5.2 结果与分析 | 第91-96页 |
| 5.2.1 cgCaM的分子特性 | 第91-92页 |
| 5.2.2 cgCaM基因在不同器官中的表达模式 | 第92-93页 |
| 5.2.3 cgCaM直系同源肽的系统发生树 | 第93-94页 |
| 5.2.4 多个物种的基因组中EF-hand家族成员的数量 | 第94-96页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第96-97页 |
| 第6章 讨论、结论与创新点 | 第97-101页 |
| 6.1 讨论 | 第97-99页 |
| 6.2 结论 | 第99-100页 |
| 6.3 创新点 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-114页 |
| 附录 | 第114-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第116-117页 |
