| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 研究的目的和意义 | 第12页 |
| 1.2 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.2.1 植物表皮毛发生机制的研究进展 | 第12-19页 |
| 1.2.2 植物表皮毛相关的抗性研究 | 第19-21页 |
| 1.2.3 基因启动子生物信息学分析 | 第21-22页 |
| 1.3 本研究的内容和技术路线 | 第22-23页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第22页 |
| 1.3.2 技术路线 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-35页 |
| 2.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第23页 |
| 2.3 T_1代转基因烟草植株形态对比观察 | 第23-24页 |
| 2.3.1 T_1代转基因烟草培养 | 第23页 |
| 2.3.2 T_1代转基因烟草阳性植株的PCR检测 | 第23-24页 |
| 2.3.3 T_1代转基因烟草体视显微镜观察 | 第24页 |
| 2.4 番茄表达植株的遗传转化 | 第24-30页 |
| 2.4.1 主要试剂配制 | 第24-26页 |
| 2.4.2 Sl HZ45基因表达载体的活化 | 第26页 |
| 2.4.3 农杆菌介导番茄遗传转化 | 第26-27页 |
| 2.4.4 转基因植株的PCR检测 | 第27-29页 |
| 2.4.5 超表达植株形态观察 | 第29-30页 |
| 2.5 番茄中Sl HZ45基因逆境胁迫表达分析 | 第30-32页 |
| 2.5.1 Sl HZ45基因表达模式分析 | 第30页 |
| 2.5.2 低温胁迫处理 | 第30页 |
| 2.5.3 盐胁迫处理 | 第30-31页 |
| 2.5.4 干旱胁迫处理 | 第31页 |
| 2.5.5 样品RNA提取及纯化 | 第31页 |
| 2.5.6 c DNA第一条链的合成 | 第31页 |
| 2.5.7 半定量RT-PCR检测Sl HZ45基因表达 | 第31-32页 |
| 2.5.8 荧光定量PCR检测Sl HZ45基因表达 | 第32页 |
| 2.6 T_1代转Sl HZ45基因烟草逆境胁迫表达分析 | 第32-34页 |
| 2.6.1 主要试剂配制 | 第32-33页 |
| 2.6.2 T_1代转Sl HZ45基因烟草逆境胁迫下种子萌发实验 | 第33页 |
| 2.6.3 T_1代转Sl HZ45基因烟草逆境胁迫下SlHZ45基因表达量实验 | 第33-34页 |
| 2.7 Sl HZ45基因启动子序列的生物信息学分析 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-50页 |
| 3.1 转Sl HZ45基因T_1代烟草植株与普通栽培烟草的形态学差异 | 第35-38页 |
| 3.1.1 转基因烟草的PCR鉴定 | 第35页 |
| 3.1.2 体视显微镜观察结果分析 | 第35-38页 |
| 3.2 Sl HZ45基因超表达番茄转化体系的构建 | 第38-39页 |
| 3.2.1 转基因番茄植株的筛选、驯化 | 第38页 |
| 3.2.2 转基因番茄PCR鉴定 | 第38-39页 |
| 3.3 转Sl HZ45基因番茄植株与普通栽培番茄的形态学差异 | 第39-44页 |
| 3.3.1 体视显微镜观察结果分析 | 第40-42页 |
| 3.3.2 扫描电子显微镜观察结果分析 | 第42-43页 |
| 3.3.3 Sl HZ45基因对番茄表皮毛发生的综合分析 | 第43-44页 |
| 3.4 Sl HZ45基因逆境胁迫下表达量分析 | 第44-48页 |
| 3.4.1 Sl HZ45基因表达模式分析 | 第44页 |
| 3.4.2 番茄中Sl HZ45基因逆境胁迫下表达量分析 | 第44-46页 |
| 3.4.3 T_1代转Sl HZ45基因烟草中Sl HZ45基因逆境胁迫下表达量分析 | 第46-48页 |
| 3.5 Sl HZ45基因启动子序列分析 | 第48-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 4.1 番茄中不同类型表皮毛作用分析 | 第50页 |
| 4.2 Sl HZ45基因在植株表皮毛发生过程的作用分析 | 第50-51页 |
| 4.3 Sl HZ45基因在番茄抗性育种中应用前景的分析 | 第51-52页 |
| 4.4 本实验的创新点 | 第52-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64页 |
