| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-21页 |
| 1.1 引言 | 第8-9页 |
| 1.2 关节软骨 | 第9-10页 |
| 1.2.1 关节软骨的结构和功能 | 第9-10页 |
| 1.2.2 关节软骨的功能 | 第10页 |
| 1.3 关节软骨的损伤与修复 | 第10-12页 |
| 1.4 人工关节软骨修复材料 | 第12-18页 |
| 1.4.1 多孔支架 | 第13-16页 |
| 1.4.2 水凝胶 | 第16-18页 |
| 1.5 课题的提出 | 第18-20页 |
| 1.5.1 选题依据 | 第18-19页 |
| 1.5.2 课题的研究思路 | 第19-20页 |
| 1.6 课题的创新点 | 第20-21页 |
| 第二章 改性纳米羟基磷灰石及壳聚糖/改性纳米羟基磷灰石复合水凝胶的制备和性能表征 | 第21-36页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验试剂及仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 改性纳米羟基磷灰石的合成 | 第22-23页 |
| 2.3.2 壳聚糖/纳米羟基磷灰石复合水凝胶的制备 | 第23页 |
| 2.4 测试与表征 | 第23-25页 |
| 2.4.1 HA-g-CS的测试表征 | 第23-24页 |
| 2.4.2 CS/HA-g-CS和CS/HA复合水凝胶的表征 | 第24-25页 |
| 2.5 结果和讨论 | 第25-35页 |
| 2.5.1 HA和HA-g-CS的FT-IR光谱测试 | 第25-26页 |
| 2.5.2 XRD分析 | 第26-27页 |
| 2.5.3 改性HA表面接枝率 | 第27-30页 |
| 2.5.4 HA-g-CS形成溶液的稳定性 | 第30-32页 |
| 2.5.5 壳聚糖水凝胶凝胶化转变时间及凝胶强度 | 第32-33页 |
| 2.5.6 CS/HA和CS/HA-g-CS复合水凝胶的凝胶化转变时间和凝胶强度 | 第33-34页 |
| 2.5.7 复合水凝胶表面形貌 | 第34-35页 |
| 2.6 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 CS/HA-g-CS复合水凝胶的生物相容性评价 | 第36-48页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验试剂及仪器 | 第36-37页 |
| 3.3 实验方法 | 第37-41页 |
| 3.3.1 HA-g-CS浸提液的制备 | 第37页 |
| 3.3.2 细胞毒性实验 | 第37-38页 |
| 3.3.3 全身急性毒性实验 | 第38-39页 |
| 3.3.4 皮肤刺激实验 | 第39页 |
| 3.3.5 致敏实验 | 第39-40页 |
| 3.3.6 全身亚急性毒性实验 | 第40-41页 |
| 3.3.7 植入安全性实验 | 第41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.4.1 细胞毒性试验 | 第41-42页 |
| 3.4.2 全身急性毒性试验 | 第42-43页 |
| 3.4.3 皮肤刺激试验 | 第43-44页 |
| 3.4.4 致敏性试验 | 第44-45页 |
| 3.4.5 全身亚急性毒性试验 | 第45-46页 |
| 3.4.6 植入安全性试验 | 第46-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 壳聚糖/改性纳米羟基磷灰石复合水凝胶对大鼠软骨缺损修复效果的研究 | 第48-62页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验仪器与试剂 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-55页 |
| 4.3.1 动物实验模型的建立 | 第49-50页 |
| 4.3.2 标本取材 | 第50-52页 |
| 4.3.3 标本的大体观察 | 第52页 |
| 4.3.4 标本的组织学观察 | 第52页 |
| 4.3.5 软骨生成标记物Ⅱ型胶原（CollagenⅡ）、糖胺多糖（GAG）、骨形态发生蛋白（BMP-2）表达水平的PCR测定 | 第52-55页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第55-61页 |
| 4.4.1 软骨缺损修复的大体观察 | 第55-57页 |
| 4.4.2 关节软骨缺损修复后的组织学评价 | 第57-58页 |
| 4.4.3 软骨生成标记物的表达 | 第58-61页 |
| 4.5 本章小结 | 第61-62页 |
| 结论与展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 附录 | 第72页 |
