介孔碳纳米球提高雷洛昔芬口服生物利用度的研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第7-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-20页 |
| 1. 雷洛昔芬 | 第12-14页 |
| 1.1 雷洛昔芬药理作用及临床应用 | 第12页 |
| 1.2 雷洛昔芬理化性质及体内药动学特性 | 第12-14页 |
| 1.3 雷洛昔芬生物利用度 | 第14页 |
| 2. 介孔碳纳米材料简介及其在淋巴给药方面的作用 | 第14-16页 |
| 2.1 碳纳米材料 | 第14-15页 |
| 2.2 介孔材料 | 第15-16页 |
| 2.3 亲水性介孔碳纳米材料 | 第16页 |
| 3. 口服淋巴靶向制剂研究进展 | 第16-19页 |
| 3.1 口服给药方式的优缺点 | 第16-17页 |
| 3.2 淋巴系统 | 第17-18页 |
| 3.3 药物肠淋巴转运途径 | 第18页 |
| 3.4 淋巴靶向制剂 | 第18-19页 |
| 4. 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 MCNs的制备与表征 | 第20-27页 |
| 1. 实验材料 | 第20-21页 |
| 1.1 仪器 | 第20-21页 |
| 1.2 试药 | 第21页 |
| 2. 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.1 溶液配制 | 第21页 |
| 2.2 MCNs的制备 | 第21-23页 |
| 2.2.1 CNs的制备 | 第21-22页 |
| 2.2.2 MCNs的制备 | 第22-23页 |
| 2.3 MCNs的表征 | 第23-24页 |
| 2.3.1 比表面积与孔径分布 | 第23页 |
| 2.3.2 粒径与形态 | 第23-24页 |
| 3. 结果与讨论 | 第24-26页 |
| 3.1 MCNs比表面积与孔径分布 | 第24-25页 |
| 3.2 MCNs粒径与形态 | 第25-26页 |
| 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 RXF-MCNs的制备与表征 | 第27-36页 |
| 1. 实验材料 | 第27-28页 |
| 1.1 仪器 | 第27-28页 |
| 1.2 试药 | 第28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.1 溶液配制 | 第28页 |
| 2.2 RXF含量测定 | 第28-29页 |
| 2.3 MCNs对RXF的等温吸附实验 | 第29页 |
| 2.4 RXF-MCNs的制备与表征 | 第29-30页 |
| 2.4.1 RXF-MCNs的制备 | 第29-30页 |
| 2.4.2 粒径、ζ 电位和形态 | 第30页 |
| 2.4.3 包封率 | 第30页 |
| 2.5 RXF-MCNs贮存稳定性考查 | 第30页 |
| 2.6 差示扫描量热测定 | 第30-31页 |
| 2.7 RXF-MCNs体外释放 | 第31页 |
| 2.7.1 制剂制备 | 第31页 |
| 2.7.2 体外释放 | 第31页 |
| 3. 结果与讨论 | 第31-35页 |
| 3.1 等温吸附实验 | 第31-32页 |
| 3.2 RXF-MCNs的制备与表征 | 第32-33页 |
| 3.3 DSC | 第33-34页 |
| 3.4 RXF-MCNs的体外释放 | 第34-35页 |
| 本章小结 | 第35-36页 |
| 第四章 RXF-MCNs体内生物利用度研究 | 第36-43页 |
| 1. 实验材料 | 第36-37页 |
| 1.1 仪器 | 第36-37页 |
| 1.2 试药 | 第37页 |
| 1.3 实验动物 | 第37页 |
| 2. 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.1 溶液配制和制剂准备 | 第37-38页 |
| 2.2 颈静脉插管手术 | 第38页 |
| 2.3 大鼠体内药动学实验 | 第38-39页 |
| 2.4 样品处理与分析 | 第39页 |
| 3. RXF含量测定 | 第39-40页 |
| 4. 结果与讨论 | 第40-42页 |
| 本章小结 | 第42-43页 |
| 第五章 MCNs对RXF葡萄糖醛酸化代谢的影响 | 第43-48页 |
| 1. 实验材料 | 第43-45页 |
| 1.1 仪器 | 第43-44页 |
| 1.2 试药 | 第44页 |
| 1.3 细胞 | 第44-45页 |
| 2. 实验方法 | 第45-46页 |
| 2.1 溶液配制 | 第45页 |
| 2.2 细胞培养 | 第45页 |
| 2.3 孵育反应 | 第45-46页 |
| 2.4 样品处理 | 第46页 |
| 3. 结果与讨论 | 第46-47页 |
| 本章小结 | 第47-48页 |
| 第六章 MCNs促进RXF口服吸收的机制研究 | 第48-59页 |
| 1. 实验材料 | 第48-50页 |
| 1.1 仪器 | 第48-49页 |
| 1.2 试药 | 第49-50页 |
| 1.3 实验细胞 | 第50页 |
| 1.4 实验动物 | 第50页 |
| 2. 实验方法 | 第50-53页 |
| 2.1 溶液配制 | 第50页 |
| 2.2 淋巴转运 | 第50-51页 |
| 2.2.1 淋巴插管手术 | 第51页 |
| 2.2.2 在体淋巴转运 | 第51页 |
| 2.3 淋巴结黑染 | 第51-52页 |
| 2.4 细胞内化 | 第52页 |
| 2.4.1 荧光碳纳米球的制备 | 第52页 |
| 2.4.2 细胞培养 | 第52页 |
| 2.4.3 细胞内化 | 第52页 |
| 2.5 跨上皮吸收 | 第52-53页 |
| 2.6 肠上皮生物粘附性 | 第53页 |
| 3. 结果与讨论 | 第53-58页 |
| 3.1 在体淋巴转运 | 第53-54页 |
| 3.2 淋巴结黑染 | 第54-55页 |
| 3.3 细胞内化 | 第55-56页 |
| 3.4 跨上皮吸收 | 第56-57页 |
| 3.5 肠上皮生物粘附性 | 第57-58页 |
| 本章小结 | 第58-59页 |
| 全文总结 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 在校期间论文发表情况 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
