| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 研究现状、成果 | 第15-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 实验材料 | 第19-24页 |
| 1.1 动物和细胞株 | 第19页 |
| 1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 1.3 实验试剂 | 第19-21页 |
| 1.4 实验试剂及配制 | 第21-24页 |
| 实验方法 | 第24-41页 |
| 2.1 体内实验方法 | 第24页 |
| 2.1.1 造模 | 第24页 |
| 2.1.2 分组用药 | 第24页 |
| 2.1.3 处理动物 | 第24页 |
| 2.2 体内实验指标检测 | 第24-35页 |
| 2.2.1 肝组织免疫组化实验 | 第24-25页 |
| 2.2.2 肝组织羟脯氨酸含量测定 | 第25-26页 |
| 2.2.3 Western blot检测大鼠肝组织Nrf2、γ-GCS蛋白的表达 | 第26-35页 |
| 2.3 体外实验方法 | 第35-36页 |
| 2.3.1 LX-2 细胞的复苏 | 第35页 |
| 2.3.2 LX-2 细胞的培养与传代 | 第35-36页 |
| 2.3.3 LX-2 细胞的冻存 | 第36页 |
| 2.4 体外实验指标检测 | 第36-40页 |
| 2.4.1 LX-2 生长曲线的绘制 | 第36-37页 |
| 2.4.2 MTT法检测两种提取方案复方对乙醛活化的LX-2 细胞增殖的影响 | 第37-40页 |
| 2.4.3 不同提取方案复方与ATRA合用对活化的LX-2 细胞谷胱甘肽(GSH)含量的影响 | 第40页 |
| 2.5 统计学方法 | 第40-41页 |
| 实验结果 | 第41-75页 |
| 3.1 体内实验结果 | 第41-51页 |
| 3.1.1 粉末提取方案的蒿鳖养阴软坚方对酒精性肝纤维化模型肝组织中的免疫组化的影响 | 第41-43页 |
| 3.1.2 不同提取方案的蒿鳖养阴软坚方对酒精性肝纤维化大鼠肝组织胶原蛋白含量的影响 | 第43-48页 |
| 3.1.3 Western blot方法检测大鼠肝组织中Nrf2蛋白、γ-GCS蛋白的表达 | 第48-51页 |
| 3.2 体外实验结果 | 第51-75页 |
| 3.2.1 不同提取方案的复方对LX-2 细胞上清液中Hyp含量和LDH活力的影响 | 第51-53页 |
| 3.2.2 绘制LX-2 生长曲线 | 第53-54页 |
| 3.2.3 不同浓度和不同作用时间乙醛对LX-2 活化增殖率的影响 | 第54-55页 |
| 3.2.4 不同提取方案的蒿鳖养阴软坚方对乙醛活化的LX-2 细胞增殖率影响 | 第55-62页 |
| 3.2.5 阳性药物莱菔硫烷 (SFN) 对乙醛活化的LX-2 细胞增殖率的影响 | 第62-69页 |
| 3.2.7 不同提取方案复方与ATRA合用对活化的LX-2 细胞谷胱甘肽(GSH)含量的影响 | 第69-75页 |
| 讨论 | 第75-87页 |
| 4.1 乙醇与酒精性肝纤维化模型的关系 | 第75-77页 |
| 4.1.1 乙醇与大鼠酒精性肝纤维化模型的关系 | 第75-76页 |
| 4.1.2 乙醛与细胞酒精性肝纤维化模型的关系 | 第76-77页 |
| 4.2 不同提取方案复方减轻酒精性肝纤维化的作用 | 第77-78页 |
| 4.2.1 不同提取方案复方对肝组织胶原蛋白含量的影响 | 第77-78页 |
| 4.3 不同提取方案复方防治酒精性肝纤维化的作用机制探讨 | 第78-83页 |
| 4.3.1 不同提取方案复方对LX-2 增殖的影响 | 第78-79页 |
| 4.3.2 与Nrf2通路抑制剂ATRA和Nrf2通路上调剂SFN作用关系比较 | 第79-83页 |
| 4.4 粉末提取方案的复方对体内、外酒精性肝纤维化模型内Nrf2蛋白以及γ-GCS蛋白表达的作用 | 第83-87页 |
| 4.4.1 粉末提取方案的复方对大鼠肝组织中的Nrf2蛋白以及 γ-GCS蛋白的影响 | 第83-85页 |
| 4.4.2 粉末提取方案的复方对乙醛活化的LX-2 细胞内Nrf2蛋白以及 γ-GCS蛋白表达的作用 | 第85-87页 |
| 结论 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-100页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第100-101页 |
| 综述 肝纤维化发病机制和相关疗法与Nrf2通路关系 | 第101-145页 |
| 综述参考文献 | 第122-145页 |
| 致谢 | 第145-146页 |
| 个人简历 | 第146页 |
