缩略语表 | 第3-9页 |
中文摘要 | 第9-12页 |
英文摘要 | 第12-15页 |
前言 | 第16-18页 |
文献回顾 | 第18-32页 |
第一部分 PRDM1在人体多种组织中的表达 | 第32-46页 |
1 材料 | 第32-35页 |
1.1 组织芯片和病例收集 | 第32-33页 |
1.2 仪器和试剂 | 第33-35页 |
2 方法 | 第35-37页 |
2.1 组织切片预处理 | 第35-36页 |
2.2 免疫组织化学染色 | 第36-37页 |
2.3 统计分析 | 第37页 |
3 结果 | 第37-43页 |
3.1 临床资料 | 第37页 |
3.2 组织病理学资料 | 第37-38页 |
3.3 免疫组化结果判读 | 第38-43页 |
4 讨论 | 第43-46页 |
4.1 PRDM1在人体绝大多数组织中表达。 | 第43页 |
4.2 PRDM1在甲状腺疾病组织中广泛表达。 | 第43-44页 |
4.3 PRDM1表达与甲状腺癌的浸润和转移能力无关,但与细胞增殖能力有关 | 第44-46页 |
第二部分 PRDM1与PVB19在桥本甲状腺炎和甲状腺乳头状癌中的共表达 | 第46-61页 |
1 材料 | 第46-49页 |
1.1 病例收集 | 第46页 |
1.2 仪器和试剂 | 第46-49页 |
2 方法 | 第49-56页 |
2.1 HT和PTC病例PVB19免疫组织化学检测 | 第49-51页 |
2.2 PRDM1/PVB19免疫荧光共聚焦检测 | 第51-52页 |
2.3 PRDM1 RNA表达分析 | 第52-53页 |
2.4 B19 DNA检测 | 第53-55页 |
2.5 PRDM1和PVB19蛋白检测 | 第55-56页 |
3 结果 | 第56-59页 |
3.1 PVB19蛋白在HT和PTC组织中的表达 | 第56-57页 |
3.2 HT和PTC组织中PRDM1和PVB19表达相关分析 | 第57页 |
3.3 新鲜组织中PRDM1和PVB19核酸和蛋白表达 | 第57-58页 |
3.4 PRDM1和PVB19在HT和PTC中的共定位 | 第58-59页 |
3.5 PRDM1和PVB19在HT和PTC中的蛋白共沉淀 | 第59页 |
4 讨论 | 第59-61页 |
4.1 在HT中PRDM1和PVB19表达阳性的细胞相同。 | 第59-60页 |
4.2 PRDM1可能与PVB19有作用。 | 第60-61页 |
第三部分 PVB19及PRDM1在桥本甲状腺炎的作用机制探索 | 第61-68页 |
1 材料 | 第61-62页 |
1.1 原代培养细胞系及质粒 | 第61页 |
1.2 仪器和试剂 | 第61-62页 |
2 方法 | 第62-64页 |
2.1 原代细胞培养及鉴定 | 第62-63页 |
2.2 质粒扩增及提取 | 第63页 |
2.3 细胞瞬时转染 | 第63-64页 |
2.4 Realtime-PCR检测 | 第64页 |
2.5 数据整理及统计学分析 | 第64页 |
3 结果 | 第64-66页 |
3.1 C细胞转染PVB19 NS1后PRDM1和NFκB水平显著上调 | 第64-65页 |
3.2 TC细胞转染PVB19 VP1后PRDM1和NFκB表达水平轻微下降 | 第65页 |
3.3 TC细胞转染PRDM1后NFκB表达水平上调 | 第65-66页 |
4 讨论 | 第66-68页 |
第四部分PRDM1在甲状腺乳头状癌中的作用机制探索 | 第68-73页 |
1 材料 | 第68-69页 |
1.1 细胞株 | 第68页 |
1.2 仪器和试剂 | 第68-69页 |
2 方法 | 第69-70页 |
2.1 细胞培养 | 第69页 |
2.2 细胞爬片免疫组化染色 | 第69页 |
2.3 PRDM1基因RNA干涉 | 第69-70页 |
2.4 细胞总RNA和总蛋白提取 | 第70页 |
2.5 检测细胞处理前后基因和蛋白检测 | 第70页 |
3 结果 | 第70-71页 |
3.1 SW579细胞RNAi前后形态及生长状态改变 | 第70页 |
3.2 SW579细胞RNAi前后PRDM1表达改变 | 第70-71页 |
4 讨论 | 第71-73页 |
小结 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-85页 |
附录 | 第85-96页 |
个人简历和研究成果 | 第96-99页 |
附件 | 第99-108页 |
致谢 | 第108页 |