| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 主要英文缩略词 | 第10-14页 |
| 第1章 前言 | 第14-18页 |
| 第2章 pprM基因对耐辐射奇球菌抗氧化及干燥能力的影响 | 第18-30页 |
| 2.1 材料及仪器设备 | 第18-20页 |
| 2.1.1 实验所用菌株、培养条件 | 第18-19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要生化试剂的配制 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 DR的培养及H2O2处理菌株 | 第20页 |
| 2.2.2 辐照前后细胞内活性氧（ROS）的检测 | 第20-21页 |
| 2.2.3 细胞内过氧化氢酶活性测定 | 第21-22页 |
| 2.2.4 超氧化物歧化酶活力测定 | 第22-23页 |
| 2.2.5 菌株抗干燥能力检测 | 第23页 |
| 2.3 结果及分析 | 第23-28页 |
| 2.3.1pprM基因的缺失对菌株抗H2O2能力的影响 | 第23-25页 |
| 2.3.2 pprM基因的缺失对菌株细胞内ROS含量的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 pprM基因的缺失对菌株CAT及SOD活力的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.4 pprM基因的缺失对菌株抗干燥能力的影响 | 第27-28页 |
| 2.4 本章小结 | 第28-30页 |
| 第3章 pprM基因对耐辐射奇球菌中类胡萝卜素合成的影响 | 第30-36页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-31页 |
| 3.1.1 实验所用菌株及培养条件 | 第30页 |
| 3.1.2 主要试剂及耗材 | 第30-31页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 3.2.1 类胡萝卜素的提取及检测 | 第31页 |
| 3.2.2 LC-MS检测提取物中deinoxanthin含量 | 第31-32页 |
| 3.3 结果及分析 | 第32-35页 |
| 3.3.1 pprM基因的缺失对类胡萝卜素的含量的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.2 LC-MS检测菌株deinoxanthin含量 | 第33-35页 |
| 3.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第4章 pprM基因缺失对相关基因转录水平及离子分布的影响 | 第36-46页 |
| 4.1 材料和方法 | 第36-38页 |
| 4.1.1 实验所用菌株及培养条件 | 第36-37页 |
| 4.1.2 主要试剂及耗材 | 第37页 |
| 4.1.3 主要试剂配制 | 第37页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第37-38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 4.2.1 细菌总RNA的提取 | 第38页 |
| 4.2.2 DNAaseI去除RNA中的DNA | 第38-39页 |
| 4.2.3 cDNA的合成 | 第39页 |
| 4.2.4 实时定量PCR（quantitative real-time PCR） | 第39-41页 |
| 4.2.5 感应耦合等离子体质谱仪(ICP-MS)测细胞内锰、铁离子浓度 | 第41页 |
| 4.3 结果及分析 | 第41-44页 |
| 4.3.1 细菌RNA提取电泳结果 | 第41-42页 |
| 4.3.2 pprM基因的缺失对基因转录水平的影响 | 第42-43页 |
| 4.3.3 细胞内锰、铁离子含量测定 | 第43-44页 |
| 4.4 本章小结 | 第44-46页 |
| 第5章 讨论 | 第46-52页 |
| 第6章 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 文献综述 | 第62-72页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
