| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-34页 |
| 1.1 微生物胞外呼吸 | 第14-18页 |
| 1.1.1 微生物胞外电子受体类型 | 第14-16页 |
| 1.1.2 胞外呼吸微生物 | 第16-18页 |
| 1.2 胞外电子传递途径及机制研究进展 | 第18-24页 |
| 1.2.1 直接电子传递机制-直接接触机制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 直接电子传递-纳米导线 | 第20-21页 |
| 1.2.3 间接电子传递-电子穿梭体 | 第21-22页 |
| 1.2.4 其他间接电子传递 | 第22-24页 |
| 1.3 胞外电子传递的细胞色素c结构及功能 | 第24-28页 |
| 1.3.1 电子传递—起始于细胞质膜 | 第25页 |
| 1.3.2 电子传递—通过周质空间 | 第25-26页 |
| 1.3.3 电子传递—穿过细胞外膜 | 第26-27页 |
| 1.3.4 电子传递过程中的蛋白复合体结构—MtrCBA和MtrFDE | 第27-28页 |
| 1.4 原位UV/vis光谱法在微生物与矿物研究中的应用 | 第28-32页 |
| 1.5 本文研究目的与主要内容 | 第32-34页 |
| 1.5.1 本文研究目的 | 第32页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 Shewanella oneidensis MR-1及其突变体还原水铁矿的生物转化研究 | 第34-58页 |
| 2.1 引言 | 第34-35页 |
| 2.2 材料与方法 | 第35-38页 |
| 2.2.1 材料 | 第35页 |
| 2.2.2 水铁矿制备 | 第35-36页 |
| 2.2.3 野生型和突变体MR-1对水铁矿的生物转化 | 第36-37页 |
| 2.2.4 分析方法 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-55页 |
| 2.3.1 突变体对水铁矿生物还原的作用 | 第38-40页 |
| 2.3.2 突变体对水铁矿生物矿化的作用 | 第40-47页 |
| 2.3.3 生物还原和生物矿化的热力学 | 第47-51页 |
| 2.3.4 微生物还原产生亚铁催化晶相转化过程 | 第51-53页 |
| 2.3.5 水铁矿生物转化中蛋白的作用 | 第53-55页 |
| 2.4 本章小结 | 第55-58页 |
| 第三章 不同培养条件对Shewanella oneidensis MR-1原位细胞色素c还原Cr(VI)的影响 | 第58-84页 |
| 3.1 引言 | 第58-59页 |
| 3.2 材料与方法 | 第59-65页 |
| 3.2.1 材料 | 第59-61页 |
| 3.2.2 MR-1细胞悬液外膜细胞色素c定量 | 第61-63页 |
| 3.2.3 MR-1还原Cr(Ⅵ)的光谱动力学 | 第63页 |
| 3.2.4 不同培养条件下MR-1还原Cr(Ⅵ) | 第63-64页 |
| 3.2.5 各种活体突变体细胞中细胞色素c还原Cr(Ⅵ) | 第64页 |
| 3.2.6 MR-1细胞表征和Cr种类鉴定 | 第64-65页 |
| 3.3 结果 | 第65-80页 |
| 3.3.1 活体细胞中细胞色素c还原Cr(Ⅵ)的光谱监测 | 第65-67页 |
| 3.3.2 活体突变体细胞中细胞色素c还原Cr(Ⅵ) | 第67-69页 |
| 3.3.3 初始细胞浓度的影响 | 第69页 |
| 3.3.4 初始Cr(Ⅵ)浓度的影响 | 第69-70页 |
| 3.3.5 添加外源Cr(Ⅲ)浓度的影响 | 第70-74页 |
| 3.3.6 pH的影响 | 第74页 |
| 3.3.7 温度的影响 | 第74-77页 |
| 3.3.8 不同电子供体的影响 | 第77页 |
| 3.3.9 氧气的影响 | 第77-80页 |
| 3.4 讨论 | 第80-82页 |
| 3.4.1 MR-1细胞色素c还原Cr(Ⅵ)的胞外电子传递过程 | 第80页 |
| 3.4.2 MR-1自身分泌电子穿梭体对反应体系的影响 | 第80-81页 |
| 3.4.3 pH对MR-1细胞色素c还原Cr(Ⅵ)的影响 | 第81页 |
| 3.4.4 初始Cr(Ⅵ)浓度对MR-1细胞色素c还原Cr(VI)的影响（毒性机理） | 第81-82页 |
| 3.5 本章小结 | 第82-84页 |
| 第四章 Shewanella oneidensis MR-1活体细胞色素c介导的醌还原光谱动力学与热力学研究 | 第84-104页 |
| 4.1 引言 | 第84-85页 |
| 4.2 材料与方法 | 第85-87页 |
| 4.2.1 材料 | 第85页 |
| 4.2.2 活体细胞悬液中细胞色素c的定量 | 第85-86页 |
| 4.2.3 MR-1还原AQDS的步骤 | 第86-87页 |
| 4.2.4 电化学测量 | 第87页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第87-102页 |
| 4.3.1 活体MR-1细胞细胞色素c还原AQDS动力学 | 第87-91页 |
| 4.3.2 在各种条件下AQDS和细胞色素c的动力学 | 第91-97页 |
| 4.3.3 MR-1还原AQDS的热力学分析 | 第97-102页 |
| 4.4 本章小结 | 第102-104页 |
| 第五章 Shewanella oneidensis MR-1活体细胞色素c介导的不同螯合铁还原光谱动力学研究 | 第104-120页 |
| 5.1 引言 | 第104-105页 |
| 5.2 材料与方法 | 第105-108页 |
| 5.2.1 材料 | 第105-106页 |
| 5.2.2 螯合铁制备 | 第106页 |
| 5.2.3 MR-1细胞悬液细胞色素c定量 | 第106-107页 |
| 5.2.4 Shewanella oneidensis MR-1活体外膜细胞色素c还原螯合铁的光谱动力学过程 | 第107-108页 |
| 5.2.5 各种活体突变体细胞中细胞色素c还原螯合铁 | 第108页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第108-118页 |
| 5.3.1 活体细胞中外膜细胞色素c还原螯合铁的光谱动力学 | 第108-111页 |
| 5.3.2 活体突变体细胞中细胞色素c还原Fe(Ⅲ)-柠檬酸 | 第111-114页 |
| 5.3.3 活体突变体细胞中细胞色素c还原不同类型的螯合铁的研究 | 第114-118页 |
| 5.4 本章小结 | 第118-120页 |
| 总结与展望 | 第120-124页 |
| 主要结论 | 第120-121页 |
| 论文创新点 | 第121-122页 |
| 论文不足与展望 | 第122-124页 |
| 参考文献 | 第124-148页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第148-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
| Ⅳ-2答辩委员会对论文的评定意见 | 第150页 |
