西瓜体细胞无性系的发生和变异研究
| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 综述 | 第12-25页 |
| 1 植物体细胞无性系变异极其研究现状 | 第12-21页 |
| ·植物体细胞无性系的发生 | 第12-13页 |
| ·植物体细胞无性系变异 | 第13-21页 |
| ·无性系变异的产生 | 第13-16页 |
| ·无性系变异的特点 | 第16-17页 |
| ·无性系变异的影响因素 | 第17-18页 |
| ·无性系变异的检测 | 第18-19页 |
| ·无性系变异与育种工作 | 第19-21页 |
| 2 西瓜体细胞无性系的发生和变异 | 第21-25页 |
| ·西瓜体细胞无性系的发生 | 第21-23页 |
| ·基因型和苗龄 | 第21-22页 |
| ·外植体类型 | 第22页 |
| ·激素种类和浓度 | 第22-23页 |
| ·其他添加物 | 第23页 |
| ·西瓜体细胞无性系变异 | 第23-25页 |
| 第一节 西瓜组织培养再生体系的建立 | 第25-40页 |
| 1 材料和方法 | 第25-29页 |
| ·材料 | 第25页 |
| ·方法 | 第25-26页 |
| ·无菌苗体系的建立 | 第25页 |
| ·未成熟子叶的准备 | 第25-26页 |
| ·子叶的切割方式 | 第26页 |
| ·器官发生及植株再生 | 第26-28页 |
| ·培养基 | 第26-27页 |
| ·培养方法和条件 | 第27-28页 |
| ·褐化抑制及诱导率的优化 | 第28-29页 |
| 2. 结果与分析 | 第29-38页 |
| ·外植体的制备 | 第29-30页 |
| ·无菌苗的制备 | 第29页 |
| ·未成熟子叶的获取 | 第29-30页 |
| ·愈伤组织和不定芽的诱导 | 第30-33页 |
| ·以无菌苗子叶为外植体的诱导 | 第30-31页 |
| ·以未成熟子叶为外植体的诱导 | 第31-33页 |
| ·褐化抑制及诱导率的提高 | 第33-35页 |
| ·不定芽的生长 | 第35-37页 |
| ·无根苗的生根 | 第37-38页 |
| ·再生植株移栽 | 第38页 |
| 3. 讨论 | 第38-40页 |
| 第二节 再生植株的性状观察 | 第40-45页 |
| 1. 材料和方法 | 第40-41页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41页 |
| ·外观表型观察 | 第41页 |
| ·四倍体植株的检测 | 第41页 |
| 2. 结果与分析 | 第41-44页 |
| ·外观表型检测 | 第41-43页 |
| ·四倍体植株的检测 | 第43-44页 |
| ·气孔和叶绿体的观察 | 第43页 |
| ·根尖染色体观察 | 第43-44页 |
| 3. 讨论 | 第44-45页 |
| 第三节 再生植株的基因多态性分析 | 第45-57页 |
| 1. 材料和方法 | 第45-47页 |
| ·材料 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-47页 |
| ·西瓜总DNA的提取 | 第45-46页 |
| ·RAPD分子标记的PCR扩增与电泳检测 | 第46-47页 |
| 2. 结果与分析 | 第47-55页 |
| ·西瓜总DNA的提取及检验 | 第47-48页 |
| ·RAPD分子标记的PCR扩增与电泳检测条件优化 | 第48-49页 |
| ·再生植株的RAPD多态性检测 | 第49-55页 |
| 3. 讨论 | 第55-57页 |
| 结论与展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 附录：常用培养基和试剂的配制 | 第68-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
