| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 缩略词表 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-36页 |
| 1 植物花发育机制 | 第16-21页 |
| ·引言 | 第16页 |
| ·花的发端 | 第16-17页 |
| ·花发育及器官特异性：经典ABC(E)模型 | 第17-19页 |
| ·花分生组织的调控及雌蕊发育 | 第19-21页 |
| 2 小RNAs分类及miRNAs研究概况 | 第21-28页 |
| ·小RNAs的定义和分类 | 第21-22页 |
| ·miRNA分子的发现及体内代谢 | 第22-23页 |
| ·miRNA的作用机制 | 第23-24页 |
| ·miRNA在花发育中的生物学功能 | 第24-28页 |
| ·miR156是植物生长周期转变的主要调控因素 | 第25-26页 |
| ·miR172在植物开花发育中的功能与调控作用 | 第26-27页 |
| ·miR159/miR319的功能与调控作用 | 第27-28页 |
| ·其他与花发育相关的miRNA | 第28页 |
| 3 高通量测序技术的发展 | 第28-31页 |
| ·高通量测序原理 | 第29页 |
| ·高通量测序技术的应用 | 第29-31页 |
| ·小RNA高通量测序 | 第30-31页 |
| ·数字基因表达谱 | 第31页 |
| 4 蛋白质组学技术的发展 | 第31-33页 |
| ·蛋白质组学的研究内容 | 第31-32页 |
| ·蛋白质组学的研究技术 | 第32-33页 |
| 5 果梅花发育及雌蕊败育的研究现状 | 第33-34页 |
| 6 本文的研究内容 | 第34-36页 |
| ·目的和意义 | 第34页 |
| ·研究内容 | 第34-36页 |
| 第二章 果梅品种开花生物学特性和花粉萌发率比较 | 第36-44页 |
| 摘要 | 第36页 |
| ABSTRACT | 第36-37页 |
| 1 材料与方法 | 第37-38页 |
| ·植物材料 | 第37页 |
| ·试验方法 | 第37-38页 |
| ·完全花与不完全花比例调查 | 第37页 |
| ·花粉量及花粉萌发率测定 | 第37-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-41页 |
| ·果梅品种间不完全花比例比较 | 第38-39页 |
| ·果梅品种间花粉量比较 | 第39-40页 |
| ·果梅品种间花粉萌发率比较 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 果梅雌蕊分化进程研究及相关生理指标测定 | 第44-56页 |
| 摘要 | 第44页 |
| ABSTRACT | 第44-46页 |
| 1 材料和方法 | 第46-48页 |
| ·供试材料 | 第46页 |
| ·化学试剂及仪器耗材 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-48页 |
| ·花器官质量调查 | 第46页 |
| ·雌蕊分化进程研究 | 第46-47页 |
| ·相关生理指标测定 | 第47页 |
| ·数据处理 | 第47-48页 |
| 2 结果和分析 | 第48-53页 |
| ·花器官发育状况分析 | 第48页 |
| ·雌蕊分化进程分析 | 第48-52页 |
| ·生理指标分析 | 第52-53页 |
| ·可溶性糖含量分析 | 第52-53页 |
| ·可溶性蛋白质含量分析 | 第53页 |
| ·淀粉含量分析 | 第53页 |
| 3 讨论和结论 | 第53-56页 |
| 第四章 果梅小分子RNA高通量测序及雌蕊发育相关microRNA的差异表达分析 | 第56-80页 |
| 摘要 | 第56页 |
| ABSTRACT | 第56-59页 |
| 1 材料和方法 | 第59-62页 |
| ·植物材料 | 第59页 |
| ·化学试剂和仪器设备 | 第59页 |
| ·小RNA文库的构建及高通量测序 | 第59页 |
| ·小RNA高通量测序的生物信息学分析 | 第59-60页 |
| ·雌蕊发育相关的miRNA的差异表达分析 | 第60页 |
| ·果梅miRNAs的预测 | 第60-61页 |
| ·荧光定量PCR验证miRNA | 第61-62页 |
| 2 结果和分析 | 第62-77页 |
| ·果梅花芽小RNA的高通量测序 | 第62-64页 |
| ·已知miRNA及进化保守性的鉴定 | 第64-69页 |
| ·果梅中新的miRNAs及碱基偏向性的鉴定 | 第69-74页 |
| ·完全花和不完全花中差异表达的miRNAs | 第74-75页 |
| ·差异表达的miRNAs靶基因预测 | 第75-77页 |
| 3 讨论 | 第77-80页 |
| ·果梅小RNAs的高通量测序 | 第77-78页 |
| ·与开花及花发育相关的miRNAs | 第78页 |
| ·潜在的涉及果梅雌蕊败育的miRNAs | 第78-80页 |
| 第五章 利用数字基因表达谱鉴定与果梅雌蕊败育相关的基因 | 第80-100页 |
| 摘要 | 第80页 |
| ABSTRACT | 第80-82页 |
| 1 材料与方法 | 第82-88页 |
| ·植物材料 | 第82-83页 |
| ·试剂与设备 | 第83页 |
| ·cDNA文库构建及高通量测序 | 第83-84页 |
| ·数字基因表达谱的生物信息学分析 | 第84页 |
| ·基因表达注释及表达量的标准化 | 第84页 |
| ·反义链转录分析 | 第84-85页 |
| ·差异表达基因的筛选 | 第85页 |
| ·Gene Ontology功能及Pathway显著性富集分析 | 第85-86页 |
| ·荧光定量PCR验证差异表达的基因 | 第86-88页 |
| 2 结果 | 第88-97页 |
| ·果梅完全花与不完全花中数字基因表达谱 | 第88-90页 |
| ·果梅完全花和不完全花数字基因表达谱中序列的注释分析 | 第90-91页 |
| ·果梅完全花和不完全花中差异基因表达注释和通路富集分析 | 第91-93页 |
| ·果梅完全花和不完全花中基因表达谱的比较 | 第93-96页 |
| ·荧光定量PCR验证差异表达基因 | 第96-97页 |
| 3 讨论 | 第97-100页 |
| ·逆境胁迫相关基因 | 第97-98页 |
| ·参与RNA代谢的相关基因 | 第98页 |
| ·细胞壁构成：果胶及脂肪酸代谢 | 第98-100页 |
| 第六章 果梅雌蕊败育的蛋白质组学比较分析 | 第100-118页 |
| 摘要 | 第100页 |
| ABSTRACT | 第100-101页 |
| 1 材料与方法 | 第101-105页 |
| ·植物材料 | 第101页 |
| ·蛋白提取 | 第101-102页 |
| ·双向凝胶电泳 | 第102-105页 |
| ·等电聚焦(IPG-IEF) | 第102-103页 |
| ·胶条平衡 | 第103页 |
| ·第二向SDS-PAGE胶电泳 | 第103页 |
| ·考马斯亮蓝染色 | 第103页 |
| ·图谱获取及数据分析 | 第103-104页 |
| ·差异表达蛋白点的胶内酶解和质谱分析 | 第104页 |
| ·数据库搜索和生物信息学分析 | 第104-105页 |
| 2 结果 | 第105-114页 |
| ·果梅完全花和不完全花蛋白质组比较 | 第105页 |
| ·果梅完全花和不完全花差异表达蛋白质的比较分析 | 第105-110页 |
| ·蛋白鉴定及功能分类 | 第110-114页 |
| 3 讨论 | 第114-118页 |
| ·与脂肪酸和甾醇生物合成相关的蛋白质 | 第114页 |
| ·与木质素合成相关的蛋白质 | 第114-115页 |
| ·与多胺合成相关的蛋白质 | 第115页 |
| ·与细胞壁构成相关的蛋白质 | 第115页 |
| ·与活性氧代谢相关的蛋白质 | 第115-118页 |
| 参考文献 | 第118-140页 |
| 全文结论 | 第140-142页 |
| 主要创新点 | 第142-144页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文 | 第144-146页 |
| 附录 | 第146-164页 |
| 致谢 | 第164页 |
