中文摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-14页 |
前言 | 第14-20页 |
第一部分 补肾活血汤对兔激素性股骨头缺血坏死的影响 | 第20-32页 |
1. 目的 | 第20页 |
2. 引言 | 第20-22页 |
3. 实验材料 | 第22-24页 |
·实验动物 | 第22页 |
·实验药物 | 第22页 |
·主要试剂 | 第22-23页 |
·主要仪器 | 第23-24页 |
·主要试剂配制 | 第24页 |
4. 实验方法 | 第24-26页 |
·分组和造模 | 第24页 |
·模型鉴定 | 第24-25页 |
·给药治疗 | 第25页 |
·标本取材 | 第25页 |
·血液生化指标的检测 | 第25-26页 |
·HE染色组织形态学观察 | 第26页 |
·数据统计分析 | 第26页 |
5. 结果 | 第26-29页 |
·模型鉴定 | 第26-28页 |
·血液生化指标检测 | 第28页 |
·组织形态学的观察 | 第28-29页 |
6. 讨论 | 第29-31页 |
·激素联合抗生素诱导股骨头缺血坏死模型的建立 | 第29-30页 |
·补肾活血汤的药理作用 | 第30页 |
·补肾活血汤治疗激素性股骨头缺血坏死 | 第30-31页 |
7. 小结 | 第31-32页 |
第二部分 离体兔BMSCs成骨-成脂分化及补肾活血汤对其影响的分子机制 | 第32-64页 |
1. 目的 | 第32页 |
2. 引言 | 第32-34页 |
3. 实验材料 | 第34-37页 |
·实验动物 | 第34页 |
·实验药物 | 第34-35页 |
·主要仪器 | 第35-36页 |
·主要试剂 | 第36页 |
·主要试剂的配制 | 第36-37页 |
4. 实验方法 | 第37-44页 |
·BMSCs的离体培养 | 第37-38页 |
·BMSCs的诱导分化 | 第38页 |
·梯度浓度地塞米松诱导BMSCs成脂分化 | 第38页 |
·梯度浓度补肾活血汤含药血清干预前后BMSCs的活性 | 第38页 |
·激素诱导成功后实验分组与药物干预 | 第38-39页 |
·油红“O”染色鉴定脂肪细胞 | 第39-40页 |
·透射电子显微镜观察BMSCs的超微结构 | 第40页 |
·BMSCs的甘油三酯检测 | 第40页 |
·BMSCs的碱性磷酸酶染色 | 第40页 |
·BMSCs的碱性磷酸酶检测 | 第40页 |
·RT-PCR检测Wnt/β-catenin信号通路上成骨、成脂相关因子的基因表达 | 第40-43页 |
·western Blotting检测Wnt/β-catenin信号通路上成骨、成脂相关因子的蛋白表达 | 第43-44页 |
·数据统计分析 | 第44页 |
5. 结果 | 第44-60页 |
·离体培养BMSCs的形态观察 | 第44-45页 |
·油红“O”染色结果 | 第45-46页 |
·碱性磷酸酶染色结果 | 第46-47页 |
·BMSCs内甘油三酯和碱性磷酸酶检测结果 | 第47-48页 |
·透射电子显微镜观察干预6d后BMSCs的超微结构 | 第48-49页 |
·RT-PCR检测Wnt/β-catenin信号通路上成骨、成脂相关因子 | 第49-54页 |
·Western Blotting检测BMSCs中Wnt/β-catenin信号通路上成骨、成脂相关因子的蛋白表达变化 | 第54-60页 |
6. 讨论 | 第60-63页 |
·补肾活血汤调控地塞米松诱导的BMSCs成骨分化的生化分析 | 第60-61页 |
·补肾活血汤调控地塞米松诱导的BMSCs Wnt/β-catenin信号转导通路的作用机制 | 第61-63页 |
7 小结 | 第63-64页 |
结论 | 第64-65页 |
创新点及意义 | 第65-66页 |
思考与展望 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-72页 |
附录 | 第72-77页 |
附录A 中英文缩略词表 | 第72-74页 |
附录B 离体实验技术路线图 | 第74-75页 |
附录C 在体实验技术路线图 | 第75-76页 |
附录D 动物与人体的每公斤体重剂量折算系数表 | 第76-77页 |
致谢 | 第77-78页 |
文献综述 | 第78-88页 |
参考文献 | 第83-88页 |
作者简历 | 第88-89页 |