| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| ·百合概述 | 第12页 |
| ·蓝色相关基因的研究进展 | 第12-17页 |
| ·蓝色花形成过程中的关键酶 | 第12-14页 |
| ·花青素的生物合成 | 第14-17页 |
| ·利用F3’5’H基因产生蓝色花 | 第17页 |
| ·百合转化受体系统的建立 | 第17-19页 |
| ·愈伤组织再生系统建立 | 第18页 |
| ·不定芽再生系统建立 | 第18-19页 |
| ·体细胞胚的再生系统建立 | 第19页 |
| ·百合农杆菌介导法的研究 | 第19-21页 |
| ·农杆菌介导法的介绍 | 第20页 |
| ·农杆菌介导法在百合研究中的应用 | 第20-21页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二章 ‘Robina’百合遗传转化受体系的建立 | 第23-31页 |
| ·材料 | 第23页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·试验方法 | 第23-24页 |
| ·胚性愈伤组织的诱导 | 第23页 |
| ·胚性愈伤组织的悬浮培养 | 第23页 |
| ·胚性愈伤组织的再生 | 第23-24页 |
| ·组培苗小鳞片诱导植株再生 | 第24页 |
| ·潮霉素浓度筛选和抑菌素浓度的确定 | 第24页 |
| ·移栽驯化培养 | 第24页 |
| ·数据统计与分析 | 第24页 |
| ·结果与分析 | 第24-29页 |
| ·百合花苞的大小对其胚性愈伤组织诱导的影响 | 第24-25页 |
| ·胚性愈伤组织的悬浮培养 | 第25-26页 |
| ·激素对组培苗小鳞片诱导植株再生的影响 | 第26页 |
| ·两种转化材料的获得 | 第26-27页 |
| ·潮霉素浓度筛选 | 第27-28页 |
| ·羧苄青霉素抑菌浓度的确定 | 第28页 |
| ·移栽驯化植株的成长变化 | 第28-29页 |
| ·讨论 | 第29页 |
| ·小结 | 第29-31页 |
| 第三章 蝴蝶兰F3’5’H结合辅助基因转化‘Robina’百合的研究 | 第31-40页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·植物材料 | 第31页 |
| ·菌株和载体 | 第31页 |
| ·试剂和仪器 | 第31-32页 |
| ·主要试剂 | 第31-32页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-33页 |
| ·农杆菌菌液制备 | 第32页 |
| ·转化受体的预培养 | 第32页 |
| ·侵染及共培养 | 第32页 |
| ·脱菌处理及筛选培养 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-35页 |
| ·预培养时间对转化效率的影响 | 第33页 |
| ·菌液浓度OD600对转化效率的影响 | 第33-34页 |
| ·共培养时间对转化效率的影响 | 第34页 |
| ·AS浓度对转化效率的影响 | 第34-35页 |
| ·转基因植株检测 | 第35-36页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第35页 |
| ·转基因植株的RT-PCR检测 | 第35-36页 |
| ·转基因植株的southern blot检测 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-38页 |
| ·转基因植株PCR检测结果 | 第36-37页 |
| ·转基因植株RT-PCR检测结果 | 第37页 |
| ·southern blot检测的结果 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| 第四章 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 缩略词 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简介 | 第49页 |