| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一部分：C57BL/6 小鼠骨髓间充质干细胞、血管内皮前体细胞的分离、扩增与鉴定 | 第14-24页 |
| 实验一：C57BL/6 小鼠骨髓间充质干细胞的分离、扩增与鉴定 | 第14-19页 |
| 1 材料 | 第14-15页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第14-15页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·主要溶液的配置 | 第15页 |
| 2 方法 | 第15-16页 |
| ·小鼠MSC的分离与培养 | 第15-16页 |
| ·流式细胞术检测小鼠MSC表面标记物 | 第16页 |
| ·小鼠MSC成骨分化鉴定 | 第16页 |
| ·小鼠MSC成软骨分化鉴定 | 第16页 |
| 3 结果 | 第16-18页 |
| ·MSC的形态学特征 | 第16-17页 |
| ·MSC的免疫表型 | 第17页 |
| ·MSC的成骨、成软骨分化 | 第17-18页 |
| 4 讨论 | 第18-19页 |
| 实验二：C57BL/6 小鼠血管内皮前体细胞的分离、扩增与鉴定 | 第19-24页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第19-20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-21页 |
| ·C57BL/6 小鼠血管内皮前体细胞的分离与培养 | 第20页 |
| ·流式细胞术检测EPC表面标记物 | 第20页 |
| ·管腔结构形成试验 | 第20-21页 |
| 3 结果 | 第21-22页 |
| ·血管内皮前体细胞的形态学特征 | 第21页 |
| ·第三代血管内皮前体细胞的表型特征 | 第21-22页 |
| ·第三代血管内皮前体细胞在基质胶上形成管腔结构 | 第22页 |
| 4 讨论 | 第22-24页 |
| 第二部分：血管内皮前体细胞对间充质干细胞成骨分化的影响 | 第24-37页 |
| 1 材料 | 第24-25页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·主要溶液的配置 | 第24-25页 |
| 2 方法 | 第25-29页 |
| ·C57BL/6 小鼠MSC、EPC的分离、培养与鉴定 | 第25页 |
| ·EPC/MSC共培养对MSC成骨分化的影响 | 第25页 |
| ·EPC条件性培养基（EPC-CM）的提取 | 第25页 |
| ·EPC-CM对MSC成骨分化的影响 | 第25页 |
| ·ELISA法检测EPC-CM中VEGF、TGFβ1、PDGF、IGF-1、SDF-1、b FGF含量 | 第25-29页 |
| ·探索EPC-CM中促进MSC成骨分化的细胞因子 | 第29页 |
| ·检测MSC表面表达VRGFR2情况 | 第29页 |
| ·统计学方法 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-35页 |
| ·MSC/EPC共培养促进MSC成骨分化 | 第29-30页 |
| ·EPC-CM促进MSC成骨分化 | 第30-31页 |
| ·EPC分泌VEGF、TGFβ1、PDGF、IGF-1、SDF-1、b FGF | 第31-32页 |
| ·VEGF、TGFβ1、IGF-1 参与EPC促进MSC成骨分化 | 第32-34页 |
| ·MSC表达VEGFR2 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-37页 |
| 第三部分：血管内皮前体细胞对间充质干细胞成软骨分化的影响 | 第37-42页 |
| 1 材料 | 第37页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第37页 |
| ·实验动物 | 第37页 |
| ·主要溶液的配置 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-38页 |
| ·C57BL/6 小鼠MSCs、EPCs的分离、培养与鉴定 | 第37页 |
| ·EPCs/MSCs共培养对MSCs成软骨分化的影响 | 第37页 |
| ·EPC条件性培养基（EPC-CM）的提取 | 第37-38页 |
| ·EPC-CM对MSC成骨分化的影响 | 第38页 |
| ·统计学方法 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-40页 |
| ·MSC/EPC共培养促进MSC成软骨分化 | 第38-39页 |
| ·EPC-CM对MSC成软骨分化无影响 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 文献综述 | 第49-57页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58-59页 |
| 导师评阅表 | 第59页 |
