| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 前言 | 第10-17页 |
| 第一章 蜂胶乙醇提取物对过氧化氢诱导的大鼠 BRL 肝细胞损伤的保护作用 | 第17-29页 |
| 1 引言 | 第17页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第17-20页 |
| ·材料与试剂 | 第17-18页 |
| ·主要溶液的配制 | 第18-20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| 3 试验方法 | 第20-23页 |
| ·蜂胶提取物的制备 | 第20页 |
| ·大鼠 BRL 肝细胞的培养 | 第20-22页 |
| ·实验分组 | 第22页 |
| ·SRB 法检测细胞存活率 | 第22页 |
| ·Hoech33258 染色检测细胞存活率 | 第22-23页 |
| ·细胞培养液中 ALT、AST、SOD、MDA 的测定 | 第23页 |
| ·实验数据处理 | 第23页 |
| 4 结果 | 第23-27页 |
| ·EECP 和 EEBP 对 H2O2诱导的大鼠 BRL 肝细胞损伤存活率的影响 | 第23-24页 |
| ·EECP 和 EEBP 对 H2O2诱导的大鼠 BRL 肝细胞损伤凋亡率的影响 | 第24-25页 |
| ·EECP 和 EEBP 对 H2O2诱导的 BRL 肝细胞损伤培养液中 ALT、AST、MDA和 SOD 的影响 | 第25-27页 |
| 5 讨论 | 第27-29页 |
| 第二章 中国蜂胶抗肿瘤活性研究 | 第29-62页 |
| 1 引言 | 第29页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第29-39页 |
| 3 实验方法 | 第39-46页 |
| ·细胞复苏 | 第39页 |
| ·细胞传代 | 第39页 |
| ·细胞计数 | 第39-40页 |
| ·细胞冻存 | 第40页 |
| ·倒置相差显微镜观察细胞形态 | 第40页 |
| ·细胞存活率 SRB 法检测 | 第40页 |
| ·吖啶橙染色观察细胞核凝集和片段化 | 第40-41页 |
| ·Hoech33258 染色观察细胞存活状态 | 第41页 |
| ·划痕实验 | 第41-42页 |
| ·细胞 ROS 水平测定 | 第42页 |
| ·JC‐1 荧光探针检测细胞的线粒体膜电位 | 第42-43页 |
| ·免疫组织化学法检测 p53 蛋白和核转录因子 NF-κB p65 蛋白的表达量 | 第43页 |
| ·Western Blot 法检测 p53、NF-ｋB p65 、A7 蛋白的表达量 | 第43-46页 |
| ·实验数据处理 | 第46页 |
| 4 实验结果 | 第46-47页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7、MDA-MB-231 和 HUVEC 形态上的影响 | 第46页 |
| ·中国蜂胶细胞 MCF-7、MDA-MB-231 和 HUVEC 存活率的影响 | 第46页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7 和 MDA-MB-231 细胞核的影响 | 第46页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7 和 MDA-MB-231 迁移率的影响 | 第46-47页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7 和 MDA-MB-231 内 ROS 和线粒体膜电位的影响 | 第47页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7 和 MDA-MB-231 内抑癌基因 p53 和核转录因子 NF-ｋB 蛋白的表达量的影响 | 第47页 |
| ·中国蜂胶对细胞 MCF-7 和 MDA-MB-231 内抑癌基因 p53，核转录因子 NF-ｋB，膜联蛋白 A7，Casepase3 蛋白表达量的影响 | 第47页 |
| 5 讨论 | 第47-50页 |
| 6 附图 | 第50-62页 |
| 第三章 结论与展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第72页 |
