| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩写词表 | 第9-11页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 文献综述 | 第13-18页 |
| 主要技术路线 | 第18-19页 |
| 引言 | 第19-20页 |
| 1 材料与方法 | 第20-32页 |
| ·试验材料 | 第20-21页 |
| ·主要菌株及其培养 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·主要培养基及试剂配制 | 第20-21页 |
| ·试验动物 | 第21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-32页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 AI-2 的检测 | 第21-22页 |
| ·PCR 引物设计 | 第22页 |
| ·luxS 和 pfs 的 mRNA 水平检测 | 第22-24页 |
| ·luxS 和 pfs 的表达及纯化 | 第24-27页 |
| ·重组蛋白 LuxS 多克隆抗体的制备及效价测定 | 第27页 |
| ·AI-2 的体外合成 | 第27页 |
| ·不同 AI-2 浓度下 APEC 生物被膜的检测 | 第27-28页 |
| ·luxS 在禽致病性大肠杆菌中的分布 | 第28页 |
| ·luxS 缺失株和回复株的构建 | 第28-30页 |
| ·生长曲线的测定 | 第30页 |
| ·运动性的测定 | 第30页 |
| ·半数致死量（LD50）的测定 | 第30页 |
| ·细胞黏附和入侵 | 第30-31页 |
| ·樱桃谷鸭感染试验 | 第31页 |
| ·毒力基因的转录水平的测定 | 第31-32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-47页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 AI-2 的检测及其因素分析 | 第32-34页 |
| ·不同 APEC 的 AI-2 活性检测 | 第32页 |
| ·不同生长阶段下 APEC 的 AI-2 活性检测 | 第32页 |
| ·不同培养条件下 APEC 的 AI-2 活性检测 | 第32-33页 |
| ·APEC 在不同生长阶段 luxS 和 pfs mRNA 水平 | 第33-34页 |
| ·APEC 在不同培养条件下 luxS 和 pfs mRNA 水平 | 第34页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 AI-2 的合成及其对生物被膜的影响 | 第34-38页 |
| ·luxS 和 pfs 的克隆以及表达载体的构建 | 第34-35页 |
| ·LuxS 和 Pfs 的表达、纯化及可溶性分析 | 第35页 |
| ·AI-2 浓度测定标准曲线 | 第35-36页 |
| ·AI-2 的体外合成及活性检测 | 第36-37页 |
| ·AI-2 对 APEC 生物被膜形成能力的影响 | 第37-38页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 luxS 缺失株的构建及生物学特性分析 | 第38-47页 |
| ·luxS 在禽致病性大肠杆菌中的分布 | 第38页 |
| ·luxS 带同源臂的抗氯霉素 DNA 片段的构建 | 第38-41页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 luxS 缺失株的鉴定 | 第41-42页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 luxS 回复株的构建 | 第42页 |
| ·不同菌株中 AI-2 的检测 | 第42-43页 |
| ·生长曲线的测定 | 第43-44页 |
| ·luxS 对 APEC 运动性的影响 | 第44页 |
| ·luxS 对 APEC 致病性的影响 | 第44-46页 |
| ·luxS 对 APEC 毒力基因的转录水平的影响 | 第46-47页 |
| 3 讨论 | 第47-50页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 AI-2 的存在 | 第47页 |
| ·不同生长时期 AI-2 的产生及其 luxS 和 pfs 转录水平分析 | 第47页 |
| ·不同培养条件 AI-2 的产生及其 luxS 和 pfs 转录水平分析 | 第47-48页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 AI-2 的合成 | 第48页 |
| ·AI-2 对禽致病性大肠杆菌生物被膜形成能力的影响 | 第48页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 luxS 缺失株运动性分析 | 第48页 |
| ·禽致病性大肠杆菌 luxS 缺失株致病性分析 | 第48-50页 |
| 4 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57页 |
| 附作者在读研期间发表的学术论文 | 第57页 |
