| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-14页 |
| 第2章 实验材料与仪器 | 第14-19页 |
| ·实验组织标本 | 第14页 |
| ·主要实验仪器 | 第14-15页 |
| ·主要实验试剂 | 第15-16页 |
| ·半定量 RT-PCR 试剂 | 第15-16页 |
| ·荧光定量 qRT-PCR 试剂 | 第16页 |
| ·免疫组化试剂 | 第16页 |
| ·主要配制试剂 | 第16-18页 |
| ·0.1%DEPC 水 | 第16-17页 |
| ·0.1%DEPC 处理水 | 第17页 |
| ·电泳缓冲液 | 第17页 |
| ·75%无核酶乙醇 | 第17页 |
| ·2%琼脂糖凝胶 | 第17页 |
| ·1%琼脂糖凝胶 | 第17页 |
| ·柠檬酸盐缓冲液 | 第17页 |
| ·PBS 缓冲液 | 第17-18页 |
| ·梯度酒精 | 第18页 |
| ·DAB 显色液 | 第18页 |
| ·1:200Pim-1 抗体 | 第18页 |
| ·1:200c-Myc 抗体 | 第18页 |
| ·1%盐酸酒精 | 第18页 |
| ·物品处理 | 第18-19页 |
| ·所有用于提取 RNA 的相关塑料物品去 RNase 处理 | 第18页 |
| ·所有用于提取 RNA 的玻璃及金属物品 | 第18-19页 |
| 第3章 实验方法 | 第19-27页 |
| ·RT-PCR 技术测定 Pim-1 mRNA 表达的变化 | 第19-23页 |
| ·引物设计合成 | 第19页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第19-20页 |
| ·第一链 cDNA 的合成 | 第20-21页 |
| ·PCR 扩增 | 第21-23页 |
| ·qRT-PCR 技术测定 Pim-1 mRNA 表达的变化 | 第23-24页 |
| ·引物设计合成 | 第23页 |
| ·总 RNA 提取 | 第23页 |
| ·逆转录 | 第23页 |
| ·qRT-PCR 扩增 | 第23-24页 |
| ·免疫组织化学法检测 Pim-1 以及 c-Myc 在非小细胞性肺癌中的表达变化及其两者表达的的相关性 | 第24-26页 |
| ·实验前准备 | 第24页 |
| ·非生物素二步法免疫组化法 | 第24-25页 |
| ·结果判定 | 第25-26页 |
| ·统计学方法 | 第26-27页 |
| 第4章 实验结果 | 第27-32页 |
| ·RT-PCR 检测 Pim-1 在非小细胞性肺癌组织中的表达 | 第27-28页 |
| ·组织 RNA 的纯度及完整性检测 | 第27页 |
| ·Pim-1 基因转录表达结果 | 第27-28页 |
| ·荧光实时定量 PCR 检测 Pim-1 蛋白在非小细胞性肺癌组织中的表达 | 第28-29页 |
| ·免疫组化检测 Pim-1 及 c-Myc 在非小细胞性肺癌组织中的表达 | 第29-31页 |
| ·非小细胞性肺癌组织中 Pim-1 及 c-Myc 蛋白表达的相关性 | 第31-32页 |
| 第5章 讨论 | 第32-38页 |
| 第6章 结论与展望 | 第38-39页 |
| ·结论 | 第38页 |
| ·展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 附图 | 第44-48页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-57页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
