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培美曲塞诱导神经管畸形动物模型及其机制的研究

摘要第1-11页
Abstract第11-14页
英文缩写对照表第14-15页
前言第15-19页
第一部分 培美曲塞诱导神经管畸形小鼠模型的建立第19-31页
 1 前言第19-20页
 2 材料第20-21页
   ·实验动物来源及饲养第20页
   ·实验试剂第20页
   ·实验器材第20-21页
   ·溶液配制第21页
 3. 方法第21-23页
   ·神经管畸形动物模型的建立第21-22页
   ·取材第22页
   ·组织病理检测第22-23页
   ·数据分析第23页
 4. 结果第23-27页
 5. 讨论第27-31页
第二部分 PMX诱导神经管畸形小鼠胚胎中叶酸及其代谢产物的改变第31-45页
 1. 前言第31-32页
 2. 材料第32-33页
   ·实验动物来源及饲养第32页
   ·实验动物分组第32-33页
   ·主要仪器第33页
   ·试剂第33页
 3. 实验方法第33-38页
   ·高效液相色谱方法检测叶酸(FA)、5甲基四氢叶酸(5-MeTHF),5甲酰四氢叶酸(5-FoTHF) , S腺昔甲硫氨酸(SAM),S腺苷同型半胱氨酸(SAH)的含量第33-34页
   ·ELISA方法检测叶酸的含量第34-35页
   ·DHFR的活性测定第35-37页
   ·叶酸代谢过程关键酶的mRNA表达水平测定第37-38页
   ·统计学分析第38页
 4. 实验结果第38-42页
   ·高效液相色谱方法检测PMX对叶酸及相关代谢产物水平的影响第38-39页
   ·ELISA方法检测PMX对叶酸水平的影响第39-40页
   ·PMX降低神经管畸形小鼠胚胎的DHFR活性第40-41页
   ·亚甲基四氢叶酸还原酶(MTHFR)和腺苷酸合成酶(TS)的mRNA表达第41-42页
 5. 讨论第42-45页
第三部分 PMX诱导神经管畸形小鼠胚胎基因组拷贝数变异的检测及变异基因的筛选第45-69页
 1 前言第45-47页
 2 材料第47页
   ·实验动物来源及饲养第47页
   ·实验仪器第47页
   ·实验试剂第47页
 3 实验方法第47-54页
   ·实验动物分组第48页
   ·aCGH方法检测小鼠胚胎基因组拷贝数变异第48-50页
   ·全基因组表达谱芯片技术筛选PMX诱导的NTDs小鼠胚胎组织变异基因第50-53页
   ·RT-PCR检验变异基因变化水平第53-54页
   ·统计学分析第54页
 4 实验结果第54-64页
   ·aCGH方法检测筛选出拷贝数变异第54-55页
   ·全基因组表达芯片RNA质量检测结果第55-56页
   ·数据分析第56-59页
   ·SAM软件分析结果第59-63页
   ·RT-PCR方法验证基因筛选结果第63-64页
 5 讨论第64-69页
第四部分 PMX诱导NTDs动物模型中胚胎干细胞DNA的改变第69-84页
 1 前言第69-71页
 2 材料第71-72页
   ·细胞来源及主要试剂第71页
   ·主要仪器第71页
   ·试剂的配制第71-72页
 3 实验方法第72-77页
   ·小鼠胚胎干细胞培养第72页
   ·小鼠胚胎干细胞ESC的传代及冻存第72页
   ·小鼠胚胎干细胞ESC的给药及处理第72页
   ·DHE荧光探针检测细胞内活性氧(ROS)第72-73页
   ·单细胞凝胶电泳实验(彗星实验)第73-75页
   ·细胞内GSH和MDA含量的测定第75-77页
   ·统计学分析第77页
 4 实验结果第77-81页
   ·PMX诱导SV129 ESC细胞中ROS水平明显上调第77-78页
   ·PMX诱导SV129 ESC细胞中DNA损伤明显增加第78-80页
   ·ELISA方法检测PMX增加胚胎干细胞内GSH和MDA的含量第80-81页
 5 讨论第81-84页
全文小结第84-86页
结论第86-87页
综述第87-96页
参考文献第96-108页
攻读博士学位期间发表的文章第108-109页
致谢第109-110页
个人简历第110页

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