摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
第一章 前言 | 第11-23页 |
·糖蜜酒精废液概述 | 第11-12页 |
·糖蜜酒精废液的来源 | 第11页 |
·糖蜜酒精废液的特性 | 第11-12页 |
·糖蜜酒精废液的危害 | 第12页 |
·糖蜜废水治理技术 | 第12-19页 |
·资源化利用现状 | 第12-13页 |
·理化处理 | 第13-15页 |
·生物处理 | 第15-19页 |
·微生物群落结构的研究方法 | 第19-22页 |
·平板分离法 | 第19-20页 |
·磷脂脂肪酸分析法 | 第20页 |
·BIOLOGO为平板分析法 | 第20页 |
·荧光原位杂交技术(FISH) | 第20页 |
·基于PCR技术的鉴定方法 | 第20-22页 |
·本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
第二章 菌群富集及处理条件优化 | 第23-34页 |
·菌群的富集 | 第23页 |
·菌群生长量、脱色率及COD去除率 | 第23-25页 |
·菌群生长量的测定 | 第23-24页 |
·COD的测定 | 第24-25页 |
·脱色率的计算 | 第25页 |
·菌群处理废水条件优化 | 第25-26页 |
·糖蜜废水浓度对菌群生长、脱色及COD去除率的影响 | 第25-26页 |
·不同废水组分对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第26页 |
·初始pH对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第26页 |
·温度对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第26页 |
·培养时间对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第26页 |
·结果与分析 | 第26-32页 |
·糖蜜废水浓度对菌群生长、脱色及COD去除率的影响 | 第26-28页 |
·不同废水组分对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第28-29页 |
·初始pH对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第29-30页 |
·温度对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响 | 第30-31页 |
·培养时间对菌群生长、脱色率及COD去除率的的影响 | 第31-32页 |
·小结 | 第32-34页 |
第三章 微生物群落结构分析 | 第34-59页 |
·实验所用的菌株和载体 | 第34页 |
·培养基及培养条件 | 第34页 |
·主要溶液和缓冲液、酶的配制 | 第34-36页 |
·本实验所用引物 | 第36页 |
·总DNA的提取 | 第36-38页 |
·琼脂糖检测目的DNA | 第38页 |
·PCR扩增技术 | 第38-40页 |
·细菌16S rDNA序列的扩增 | 第38-39页 |
·古细菌16S rDNA序列的扩增 | 第39页 |
·细菌16S rDNAV3区序列的扩增 | 第39-40页 |
·菌落PCR | 第40页 |
·PCR产物的纯化 | 第40-41页 |
·目的DNA的连接反应 | 第41页 |
·感受态细胞的制备 | 第41页 |
·转化 | 第41-42页 |
·重组质粒的提取 | 第42页 |
·细菌16S RDNA多样性分析 | 第42-45页 |
·细菌16S rDNA文库的构建 | 第42-43页 |
·双酶切反应 | 第43页 |
·中性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测DNA | 第43-44页 |
·PAGE胶银染及酶切图谱分析 | 第44-45页 |
·DNA序列测定及构建系统发育树 | 第45页 |
·DGGE技术 | 第45-47页 |
·DGGE凝胶制备与电泳 | 第45-46页 |
·DGGE银染 | 第46页 |
·DGGE目的条带分析 | 第46-47页 |
·总DNA的提取与纯化 | 第47页 |
·细菌16S RDNA多样性及系统发育分析 | 第47-53页 |
·细菌16S rDNA的扩增 | 第47-48页 |
·细菌16S rDNA文库的构建 | 第48-49页 |
·细菌16S rDNA限制性多态性分析 | 第49-50页 |
·细菌16S rDNA多样性及系统发育分析 | 第50-53页 |
·细菌的DGGE分析 | 第53-55页 |
·古细菌的DGGE分析 | 第55-57页 |
·小结 | 第57-59页 |
第四章 讨论与展望 | 第59-62页 |
·讨论 | 第59-61页 |
·微生物对糖蜜废水的生物脱色效果 | 第59页 |
·微生物群落结构分析 | 第59-61页 |
·展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第72页 |