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糖蜜酒精废水的生物脱色及微生物群落结构分析

摘要第1-6页
ABSTRACT第6-11页
第一章 前言第11-23页
   ·糖蜜酒精废液概述第11-12页
     ·糖蜜酒精废液的来源第11页
     ·糖蜜酒精废液的特性第11-12页
     ·糖蜜酒精废液的危害第12页
   ·糖蜜废水治理技术第12-19页
     ·资源化利用现状第12-13页
     ·理化处理第13-15页
     ·生物处理第15-19页
   ·微生物群落结构的研究方法第19-22页
     ·平板分离法第19-20页
     ·磷脂脂肪酸分析法第20页
     ·BIOLOGO为平板分析法第20页
     ·荧光原位杂交技术(FISH)第20页
     ·基于PCR技术的鉴定方法第20-22页
   ·本研究的目的和意义第22-23页
第二章 菌群富集及处理条件优化第23-34页
   ·菌群的富集第23页
   ·菌群生长量、脱色率及COD去除率第23-25页
     ·菌群生长量的测定第23-24页
     ·COD的测定第24-25页
     ·脱色率的计算第25页
   ·菌群处理废水条件优化第25-26页
     ·糖蜜废水浓度对菌群生长、脱色及COD去除率的影响第25-26页
     ·不同废水组分对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第26页
     ·初始pH对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第26页
     ·温度对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第26页
     ·培养时间对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第26页
   ·结果与分析第26-32页
     ·糖蜜废水浓度对菌群生长、脱色及COD去除率的影响第26-28页
     ·不同废水组分对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第28-29页
     ·初始pH对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第29-30页
     ·温度对菌群生长、脱色及COD去除率的的影响第30-31页
     ·培养时间对菌群生长、脱色率及COD去除率的的影响第31-32页
   ·小结第32-34页
第三章 微生物群落结构分析第34-59页
   ·实验所用的菌株和载体第34页
   ·培养基及培养条件第34页
   ·主要溶液和缓冲液、酶的配制第34-36页
   ·本实验所用引物第36页
   ·总DNA的提取第36-38页
   ·琼脂糖检测目的DNA第38页
   ·PCR扩增技术第38-40页
     ·细菌16S rDNA序列的扩增第38-39页
     ·古细菌16S rDNA序列的扩增第39页
     ·细菌16S rDNAV3区序列的扩增第39-40页
     ·菌落PCR第40页
   ·PCR产物的纯化第40-41页
   ·目的DNA的连接反应第41页
   ·感受态细胞的制备第41页
   ·转化第41-42页
   ·重组质粒的提取第42页
   ·细菌16S RDNA多样性分析第42-45页
     ·细菌16S rDNA文库的构建第42-43页
     ·双酶切反应第43页
     ·中性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测DNA第43-44页
     ·PAGE胶银染及酶切图谱分析第44-45页
     ·DNA序列测定及构建系统发育树第45页
   ·DGGE技术第45-47页
     ·DGGE凝胶制备与电泳第45-46页
     ·DGGE银染第46页
     ·DGGE目的条带分析第46-47页
   ·总DNA的提取与纯化第47页
   ·细菌16S RDNA多样性及系统发育分析第47-53页
     ·细菌16S rDNA的扩增第47-48页
     ·细菌16S rDNA文库的构建第48-49页
     ·细菌16S rDNA限制性多态性分析第49-50页
     ·细菌16S rDNA多样性及系统发育分析第50-53页
   ·细菌的DGGE分析第53-55页
   ·古细菌的DGGE分析第55-57页
   ·小结第57-59页
第四章 讨论与展望第59-62页
   ·讨论第59-61页
     ·微生物对糖蜜废水的生物脱色效果第59页
     ·微生物群落结构分析第59-61页
   ·展望第61-62页
参考文献第62-71页
致谢第71-72页
攻读硕士学位期间发表的论文第72页

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