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血塞通及L-NNA对家兔脑纹状体出血后NOS的影响及其对脑神经元的保护作用

中文摘要第1-11页
Abstract第11-13页
1 引言第13-23页
   ·一氧化氮的概述第13-15页
     ·一氧化氮的生物学特性第13-14页
     ·一氧化氮的生物合成和一氧化氮合酶的分类第14页
     ·一氧化氮合酶在脑内的分布第14-15页
   ·脑出血的研究进展第15-19页
     ·脑出血后脑损伤机制的研究进展第16-17页
       ·炎性反应与脑出血第16-17页
       ·自由基与脑出血第17页
       ·一氧化氮与脑出血第17页
     ·脑出血模型的研究进展第17-19页
       ·自体血注入 ICH 模型第17-18页
       ·胶原酶诱导 ICH 模型第18页
       ·微球囊充胀 ICH 模型第18页
       ·自发性 ICH 模型第18-19页
   ·血塞通与脑出血第19-22页
     ·活血、利水中药对脑缺血的作用第19-20页
       ·清除自由基(OFR)第19页
       ·改善血肿周围微循环第19-20页
       ·兴奋性氨甚酸的神经毒性作用第20页
       ·降低血脑屏障通透性第20页
     ·血塞通的种类第20页
     ·血塞通在脑出血中的药理作用第20-21页
       ·抗脑水肿第20-21页
       ·抗脑细胞凋亡第21页
     ·血塞通的应用前景第21-22页
   ·NOS 抑制剂与脑出血第22页
   ·本课题研究的目的和意义第22-23页
2 材料与方法第23-28页
   ·试验材料第23-24页
     ·试验动物第23页
     ·主要试剂第23页
     ·主要试验仪器第23-24页
     ·试验场地及预备试验第24页
   ·试验方法第24-28页
     ·分组及其给药方法第24页
     ·动物模型的制备第24页
     ·取材第24-25页
       ·家兔血清的分离第24-25页
       ·脑样和脑匀浆液的制备第25页
     ·脑切片制作第25页
     ·SABC 免疫组织化学染色第25-26页
     ·切片观察和测量第26页
     ·NO 浓度的测定第26页
     ·NOS 活性的测定第26-27页
       ·脑组织蛋白质含量的测定第26-27页
       ·NOS 活性测定步骤第27页
     ·数据统计与分析第27-28页
3 结果与分析第28-40页
   ·各组家兔行为学检测结果第28-29页
   ·各组家兔血清 NO 含量检测结果第29-30页
   ·各组家兔脑纹状体 NO 含量及 NOS 活性的检测结果第30-33页
     ·各组家兔脑纹状体 NO 含量第30-31页
     ·各组家兔脑纹状体 TNOS 活性检测结果第31-32页
     ·各组家兔脑纹状体 iNOS 活性检测结果第32-33页
   ·各组家兔脑纹状体 NOS 阳性神经元的变化第33-40页
     ·各组家兔脑纹状体 nNOS 阳性神经元的变化第33-37页
       ·nNOS 阳性神经元密度的变化第33-34页
       ·各组脑纹状体 nNOS 神经元胞体截面积的变化第34-35页
       ·各组脑纹状体 nNOS 神经元最长突起长度的变化第35-36页
       ·各组脑纹状体 nNOS 神经元第一级突起数的变化第36-37页
     ·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元的变化第37-40页
       ·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元密度的变化第37-38页
       ·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元胞体截面积的变化第38-39页
       ·各组脑纹状体 iNOS 神经元最长突起长度的变化第39-40页
       ·各组脑纹状体 iNOS 神经元第一级突起数的变化第40页
4 讨论第40-44页
   ·用兔作实验动物制备 ICH 模型的优点及意义第40-41页
   ·各组兔脑组织匀浆 NO 含量及血清 NO 浓度的变化第41页
   ·各组兔脑脑纹状体 NOS 活性的变化第41-43页
   ·各组兔纹状体内 nNOS、iNOS 阳性神经元的数量形态变化第43页
   ·ICH 兔模型中 NO 可能的神经损害机制及血塞通和 L-NNA 对模型兔脑组织内 NOS 的影响第43-44页
5 结论第44-46页
   ·ICH 造模方法第44-45页
   ·血塞通在脑出血损伤中的保护作用第45页
   ·L-NNA 在脑出血中的保护作用第45-46页
参考文献第46-55页
附图第55-63页
致谢第63页

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