中文摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1 引言 | 第13-23页 |
·一氧化氮的概述 | 第13-15页 |
·一氧化氮的生物学特性 | 第13-14页 |
·一氧化氮的生物合成和一氧化氮合酶的分类 | 第14页 |
·一氧化氮合酶在脑内的分布 | 第14-15页 |
·脑出血的研究进展 | 第15-19页 |
·脑出血后脑损伤机制的研究进展 | 第16-17页 |
·炎性反应与脑出血 | 第16-17页 |
·自由基与脑出血 | 第17页 |
·一氧化氮与脑出血 | 第17页 |
·脑出血模型的研究进展 | 第17-19页 |
·自体血注入 ICH 模型 | 第17-18页 |
·胶原酶诱导 ICH 模型 | 第18页 |
·微球囊充胀 ICH 模型 | 第18页 |
·自发性 ICH 模型 | 第18-19页 |
·血塞通与脑出血 | 第19-22页 |
·活血、利水中药对脑缺血的作用 | 第19-20页 |
·清除自由基(OFR) | 第19页 |
·改善血肿周围微循环 | 第19-20页 |
·兴奋性氨甚酸的神经毒性作用 | 第20页 |
·降低血脑屏障通透性 | 第20页 |
·血塞通的种类 | 第20页 |
·血塞通在脑出血中的药理作用 | 第20-21页 |
·抗脑水肿 | 第20-21页 |
·抗脑细胞凋亡 | 第21页 |
·血塞通的应用前景 | 第21-22页 |
·NOS 抑制剂与脑出血 | 第22页 |
·本课题研究的目的和意义 | 第22-23页 |
2 材料与方法 | 第23-28页 |
·试验材料 | 第23-24页 |
·试验动物 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23页 |
·主要试验仪器 | 第23-24页 |
·试验场地及预备试验 | 第24页 |
·试验方法 | 第24-28页 |
·分组及其给药方法 | 第24页 |
·动物模型的制备 | 第24页 |
·取材 | 第24-25页 |
·家兔血清的分离 | 第24-25页 |
·脑样和脑匀浆液的制备 | 第25页 |
·脑切片制作 | 第25页 |
·SABC 免疫组织化学染色 | 第25-26页 |
·切片观察和测量 | 第26页 |
·NO 浓度的测定 | 第26页 |
·NOS 活性的测定 | 第26-27页 |
·脑组织蛋白质含量的测定 | 第26-27页 |
·NOS 活性测定步骤 | 第27页 |
·数据统计与分析 | 第27-28页 |
3 结果与分析 | 第28-40页 |
·各组家兔行为学检测结果 | 第28-29页 |
·各组家兔血清 NO 含量检测结果 | 第29-30页 |
·各组家兔脑纹状体 NO 含量及 NOS 活性的检测结果 | 第30-33页 |
·各组家兔脑纹状体 NO 含量 | 第30-31页 |
·各组家兔脑纹状体 TNOS 活性检测结果 | 第31-32页 |
·各组家兔脑纹状体 iNOS 活性检测结果 | 第32-33页 |
·各组家兔脑纹状体 NOS 阳性神经元的变化 | 第33-40页 |
·各组家兔脑纹状体 nNOS 阳性神经元的变化 | 第33-37页 |
·nNOS 阳性神经元密度的变化 | 第33-34页 |
·各组脑纹状体 nNOS 神经元胞体截面积的变化 | 第34-35页 |
·各组脑纹状体 nNOS 神经元最长突起长度的变化 | 第35-36页 |
·各组脑纹状体 nNOS 神经元第一级突起数的变化 | 第36-37页 |
·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元的变化 | 第37-40页 |
·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元密度的变化 | 第37-38页 |
·各组家兔脑纹状体 iNOS 阳性神经元胞体截面积的变化 | 第38-39页 |
·各组脑纹状体 iNOS 神经元最长突起长度的变化 | 第39-40页 |
·各组脑纹状体 iNOS 神经元第一级突起数的变化 | 第40页 |
4 讨论 | 第40-44页 |
·用兔作实验动物制备 ICH 模型的优点及意义 | 第40-41页 |
·各组兔脑组织匀浆 NO 含量及血清 NO 浓度的变化 | 第41页 |
·各组兔脑脑纹状体 NOS 活性的变化 | 第41-43页 |
·各组兔纹状体内 nNOS、iNOS 阳性神经元的数量形态变化 | 第43页 |
·ICH 兔模型中 NO 可能的神经损害机制及血塞通和 L-NNA 对模型兔脑组织内 NOS 的影响 | 第43-44页 |
5 结论 | 第44-46页 |
·ICH 造模方法 | 第44-45页 |
·血塞通在脑出血损伤中的保护作用 | 第45页 |
·L-NNA 在脑出血中的保护作用 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-55页 |
附图 | 第55-63页 |
致谢 | 第63页 |