| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-17页 |
| ·乳腺癌 | 第9-10页 |
| ·AGR2 与肿瘤 | 第10-11页 |
| ·AGR2 的发现 | 第10页 |
| ·AGR2 促进肿瘤生长和迁移 | 第10-11页 |
| ·AGR2 的结构、细胞分布及潜在的结合蛋白 | 第11-13页 |
| ·AGR2 一级结构及已知功能区域 | 第11页 |
| ·AGR2 蛋白的细胞分布以及以发现的结合蛋白 | 第11-13页 |
| ·AGR2 作为诊断指标 | 第13-14页 |
| ·AGR2 作为肿瘤治疗靶标的可行性及意义 | 第14-15页 |
| ·18A4 杂交瘤细胞株 | 第15页 |
| ·课题意义及研究内容 | 第15-17页 |
| 第二章 材料与方法 | 第17-24页 |
| ·材料 | 第17-18页 |
| ·细胞株 | 第17页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·主要试剂 | 第17页 |
| ·主要仪器 | 第17-18页 |
| ·方法 | 第18-24页 |
| ·单克隆抗体18A4 的制备和纯化 | 第18-20页 |
| ·乳腺癌细胞MCF-7、T47D、 MDA-MB-231 中AGR 表达检测 | 第20-21页 |
| ·18A4 对乳腺癌细胞MCF-7、T47D、 MDA-MB-231 抑制作用检测 | 第21-24页 |
| 第三章 实验结果 | 第24-39页 |
| ·18A4 单克隆抗体的纯化 | 第24-25页 |
| ·18A4 抗体纯化后抗体纯度提高 | 第24页 |
| ·ELISA 实验检测出18A4 抗体纯化后抗体是稳定的 | 第24-25页 |
| ·考马斯亮蓝G250 法测定18A4 抗体浓度 | 第25页 |
| ·乳腺癌细胞MCF-7、 T47D、 MDA-MB-231 细胞质中都可检测到 AGR2 的表达 | 第25-29页 |
| ·免疫印记检测乳腺癌细胞 MCF-7、 T47D、 MDA-MB-231 中AGR2 的表达 | 第25-26页 |
| ·免疫荧光检测到乳腺癌细胞 MCF-7、 T47D、 MDA-MB-231 中 AGR2 的表达 | 第26-29页 |
| ·18A4 免疫沉淀检测到乳腺癌细胞T47D 上清中的AGR2 | 第29页 |
| ·18A4 抑制乳腺癌细胞MCF-7 和T47D 细胞的生长和细胞周期 | 第29-35页 |
| ·MTT 实验结果可看出18A4抑制了T47D细胞和MCF-7细胞的生长 | 第29页 |
| ·18A4 抑制乳腺癌细胞MCF-7 和T47D 细胞周期 | 第29-35页 |
| ·18A4 对乳腺癌细胞T47D 的迁移有抑制作用 | 第35-39页 |
| ·18A4 对乳腺癌细胞T47D 的迁移有抑制作用 | 第35-36页 |
| ·AGR2 可促进细胞的迁移，单克隆抗体AGR2 对这种促进有抑制 | 第36-39页 |
| 第四章 讨论 | 第39页 |
| 第五章 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 附录一 符号说明 | 第44-45页 |
| 附录二 溶液配制 | 第45-47页 |
