| 缩略词 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 1.研究背景综述 | 第13-43页 |
| ·叶绿体是光合作用的主要场所 | 第13-16页 |
| ·叶绿体的结构 | 第13-14页 |
| ·叶绿体生物发生的核质协同控制 | 第14-15页 |
| ·类囊体膜上的光合电子传递过程 | 第15-16页 |
| ·光系统Ⅱ的结构 | 第16-21页 |
| ·光系统Ⅱ反应中心 | 第17-18页 |
| ·放氧复合物 | 第18-19页 |
| ·捕光天线系统 | 第19-21页 |
| ·光系统Ⅱ的生物发生 | 第21-24页 |
| ·光系统Ⅱ的动态损伤修复 | 第24-28页 |
| ·光系统Ⅱ的光抑制损伤 | 第24-25页 |
| ·光系统Ⅱ的损伤修复循环 | 第25-26页 |
| ·参与D1周转的蛋白酶系 | 第26-28页 |
| ·D1末端加工和D1末端加工酶CtpA | 第28-41页 |
| ·加工底物——pD1 | 第29-33页 |
| ·D1蛋白C末端加工酶(CtpA) | 第33-37页 |
| ·D1蛋白C末端加工的生理意义 | 第37-41页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第41-43页 |
| 2.材料与方法 | 第43-54页 |
| ·实验材料培养 | 第43页 |
| ·生长曲线测定 | 第43页 |
| ·叶绿素荧光测定 | 第43-44页 |
| ·光合放氧速率测定 | 第44页 |
| ·突变体的筛选鉴定 | 第44-45页 |
| ·核酸操作 | 第45-46页 |
| ·RT-PCR分析 | 第46-47页 |
| ·类囊体膜制备 | 第47页 |
| ·色素含量测定 | 第47页 |
| ·蛋白质定量 | 第47-48页 |
| ·聚丙稀酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第48页 |
| ·Western blotting | 第48页 |
| ·蓝绿温和胶电泳(BN-PAGE)和第二向SDS-PAGE | 第48-49页 |
| ·AtCTPA1特异抗体的制备 | 第49-50页 |
| ·蛋白质免疫定位分析 | 第50页 |
| ·AtCTPA1基因的互补 | 第50-51页 |
| ·AtCTPA1的时空表达和胁迫响应分析 | 第51页 |
| ·强光胁迫 | 第51-52页 |
| ·光抑制处理 | 第52页 |
| ·光恢复 | 第52页 |
| ·生物信息学分析 | 第52-54页 |
| 3 结果 | 第54-80页 |
| ·突变体的筛选鉴定 | 第54-56页 |
| ·T-DNA插入对突变体中AtCTPA1表达的影响 | 第56-57页 |
| ·atctpa1突变体的基因互补 | 第57-60页 |
| ·atctpa1突变体的一般生理表型 | 第60-64页 |
| ·atctpa1突变体的生长速率 | 第60-61页 |
| ·atctpa1突变体的色素含量 | 第61页 |
| ·atctpa1突变体的叶绿素荧光分析 | 第61-63页 |
| ·atctpa1突变体的光合放氧活性 | 第63-64页 |
| ·AtCTPA1基因编码蛋白的功能定位分析 | 第64-68页 |
| ·His-tag融合重组AtCTPA1的原核表达 | 第64-65页 |
| ·AtCTPA1编码～47kDa的类囊体腔蛋白 | 第65-66页 |
| ·AtCTPA1蛋白与类囊体膜拓扑结合状态的分析 | 第66-68页 |
| ·AtCTPA1蛋白的表达模式 | 第68-69页 |
| ·AtCTPA1蛋白的时空表达 | 第68页 |
| ·不同环境胁迫因子对AtCTPA1蛋白含量的影响 | 第68-69页 |
| ·atctpa1突变体中类囊体膜光合蛋白组分的稳态分析 | 第69-70页 |
| ·atctpa1突变体类囊体膜蛋白质复合物的分析 | 第70-72页 |
| ·强光胁迫下atctpa1突变体的生长受到抑制 | 第72-73页 |
| ·野生型和atctpa1突变体在光抑制条件下光系统Ⅱ活性的变化 | 第73-74页 |
| ·光系统Ⅱ活性在弱光下的恢复 | 第74-75页 |
| ·强光下光系统Ⅱ反应中心蛋白D1的周转 | 第75-79页 |
| ·不同生物中CtpA的同源性分析 | 第79-80页 |
| 4.讨论 | 第80-88页 |
| ·AtCTPA1编码蛋白的亚细胞定位 | 第80-82页 |
| ·AtCTPA1缺失不影响拟南芥在正常光强下的生长 | 第82-84页 |
| ·AtCTPA1参与强光下PSII的修复 | 第84-88页 |
| 5.结论及展望 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-105页 |
| 致谢 | 第105页 |
