摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-36页 |
1. 非洲菊的发展简史 | 第13-17页 |
1.1 非洲菊育种史 | 第14-16页 |
1.2 非洲菊在中国的发展 | 第16-17页 |
2. 花卉的基因工程育种研究进展 | 第17-31页 |
2.1 植物基因工程的主要特点和技术 | 第20-21页 |
2.2 观赏植物的细胞转化研究 | 第21页 |
2.3 花卉作物的转基因研究进展 | 第21-31页 |
2.4 转基因花卉未来的发展趋势 | 第31页 |
3. 活性氧损伤机理 | 第31-33页 |
4. 叶绿素荧光技术 | 第33-34页 |
5. 关于P_(SAG12)-IPT基因 | 第34-36页 |
第二章 立题背景及研究内容 | 第36-39页 |
1. 立项背景 | 第36-37页 |
1.1 非洲菊在国内外的花卉市场越来越重要 | 第36页 |
1.2 培育出拥有自主知识产权的新品种日益重要 | 第36页 |
1.3 提高非洲菊品种的抗逆性延长产品的货架寿命 | 第36-37页 |
1.4 利用分子育种手段能够有效地缩短育种周期 | 第37页 |
1.5. 利用抗氧化酶系统的研究能够快速的鉴定作物的抗逆性 | 第37页 |
2. 研究内容 | 第37-39页 |
2.1 基因枪介导的遗传转化非洲菊再生体系的建立 | 第37页 |
2.2 分子生物学鉴定 | 第37页 |
2.3 叶片抗衰老研究 | 第37-39页 |
第三章 基因枪介导的遗传转化非洲菊再生体系的建立 | 第39-46页 |
1. 引言 | 第39页 |
2. 材料和方法 | 第39-42页 |
2.1 植物材料 | 第39页 |
2.2 质粒载体 | 第39-40页 |
2.3 无菌材料 | 第40页 |
2.4 不同激素组合的培养基对不定芽增值的处理 | 第40-41页 |
2.5 培养条件 | 第41页 |
2.6 不同Kan浓度对非洲菊小苗的处理 | 第41页 |
2.7 轰击材料的处理 | 第41页 |
2.8 DNA金粉子弹的制作 | 第41页 |
2.9 不同轰击距离的处理 | 第41-42页 |
2.10 转化子的筛选 | 第42页 |
3. 结果与分析 | 第42-44页 |
3.1 不同激素组合培养基对非洲菊不定芽增殖的影响 | 第42-43页 |
3.2 非洲菊小苗对卡那霉素(Kan)的敏感性 | 第43页 |
3.3 轰击距离对转化频率的影响 | 第43-44页 |
4. 讨论 | 第44-46页 |
第四章 转基因非洲菊的分子生物学鉴定 | 第46-56页 |
1. 引言 | 第46页 |
2. 材料与方法 | 第46-53页 |
2.1 植物材料 | 第46页 |
2.2 组培苗组织培养条件 | 第46-47页 |
2.3 转基因非洲菊的获得 | 第47页 |
2.4 主要化学试剂和仪器设备 | 第47-49页 |
2.5 方法 | 第49-53页 |
3. 结果 | 第53-55页 |
3.1 PCR鉴定 | 第53页 |
3.2 对pSG516质粒和非洲菊基因组 DNA提取及酶切结果 | 第53-54页 |
3.3 转基因非洲菊的 Southern结果 | 第54页 |
3.4 转基因植物的获得 | 第54-55页 |
4. 讨论 | 第55-56页 |
第五章 渗透胁迫对转基因非洲菊叶圆片抗氧化系统的影响 | 第56-66页 |
1. 引言 | 第56页 |
2. 材料和方法 | 第56-58页 |
2.1 植物材料和生长条件 | 第56-57页 |
2.2 渗透胁迫处理 | 第57页 |
2.3 酶液的提取 | 第57页 |
2.4 酶活性的测定 | 第57-58页 |
2.5 膜脂过氧化物的测定 | 第58页 |
2.6 蛋白质含量的测定 | 第58页 |
2.7 叶绿素和类胡萝卜素含量的测定 | 第58页 |
2.8 脯氨酸测定 | 第58页 |
2.9 统计分析 | 第58页 |
3. 结果 | 第58-62页 |
3.1 渗透胁迫对叶绿素和类胡萝卜素含量的影响 | 第58-59页 |
3.2 渗透胁迫处理对叶圆片蛋白质含量的影响 | 第59-60页 |
3.3 渗透胁迫对非洲菊叶圆片中抗氧化酶活性的影响 | 第60页 |
3.4 渗透胁迫对膜脂过氧化的影响 | 第60页 |
3.5 渗透胁迫对脯氨酸积累的影响 | 第60-62页 |
4. 讨论 | 第62-66页 |
第六章 转基因非洲菊叶圆片抗氧化系统活性对光氧化胁迫的响应 | 第66-74页 |
1. 引言 | 第66页 |
2. 材料和方法 | 第66-68页 |
2.1 植物材料和生长条件 | 第66-67页 |
2.2 光氧化胁迫处理 | 第67页 |
2.3 酶液的提取 | 第67页 |
2.4 酶活性的测定 | 第67-68页 |
2.5 膜脂过氧化物的测定 | 第68页 |
2.6 蛋白质含量的测定 | 第68页 |
2.7 叶绿素和类胡萝卜素含量的测定 | 第68页 |
2.8 统计分析 | 第68页 |
3. 结果 | 第68-71页 |
3.1 光氧化胁迫对叶绿素和类胡萝卜素含量的影响 | 第68页 |
3.2 光氧化胁迫处理对叶圆片蛋白质含量的影响 | 第68页 |
3.3 光氧化胁迫对非洲菊叶圆片中抗氧化酶活性的影响 | 第68-71页 |
3.4 光氧化胁迫对膜脂过氧化的影响 | 第71页 |
4. 讨论 | 第71-74页 |
第七章 转基因植株叶片的抗氧化系统对干旱胁迫的响应 | 第74-81页 |
1. 引言 | 第74页 |
2. 材料和方法 | 第74-76页 |
2.1 植物材料和生长条件 | 第74-75页 |
2.2 干旱胁迫处理 | 第75页 |
2.3 酶液的提取 | 第75页 |
2.4 酶活性的测定 | 第75页 |
2.5 膜脂过氧化物的测定 | 第75-76页 |
2.6 蛋白质含量的测定 | 第76页 |
2.8 统计分析 | 第76页 |
3. 结果 | 第76-79页 |
3.1 形态学观察 | 第76页 |
3.2 干旱胁迫对膜脂过氧化的影响 | 第76-77页 |
3.3 干旱胁迫处理对叶片蛋白质含量的影响 | 第77页 |
3.4 干旱胁迫对非洲菊叶片中抗氧化酶活性的影响 | 第77-79页 |
4. 讨论 | 第79-81页 |
第八章 干旱胁迫对转 P_(SAG12)-IPT非洲菊叶片光合作用和叶绿素荧光参数的影响 | 第81-88页 |
1. 引言 | 第81页 |
2. 材料和方法 | 第81-83页 |
2.1 植物材料和生长条件 | 第81-82页 |
2.2 干旱胁迫处理 | 第82页 |
2.3 叶绿素荧光参数的测定 | 第82页 |
2.4 光合作用参数的测定 | 第82页 |
2.5 统计分析 | 第82-83页 |
3. 结果 | 第83-87页 |
3.1 形态学观察 | 第83页 |
3.2 干旱胁迫时间对光合电子量子传递效率(ΦPSII)的影响 | 第83页 |
3.3 干旱胁迫时间对光照条件下可变荧光与最大荧光的比值的影响 | 第83-84页 |
3.4 干旱胁迫时间对光化学淬灭系数的影响 | 第84页 |
3.5 干旱胁迫对光合作用参数的影响 | 第84-85页 |
3.6 干旱胁迫对叶绿素荧光参数的影响 | 第85-87页 |
4. 讨论 | 第87-88页 |
第九章 结论与讨论 | 第88-93页 |
参考文献 | 第93-101页 |
附录一 主要英文名称缩写表 | 第101-103页 |
附录二 非洲菊(Gerbera jamesonii)年表 | 第103-108页 |
致谢 | 第108页 |