| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一部分：缺氧缺糖损伤模型的建立——不同实验溶液对原代培养大鼠皮质神经元缺氧缺糖损伤的影响 | 第15-33页 |
| 引言 | 第15-16页 |
| 材料 | 第16-19页 |
| 1、实验动物 | 第16页 |
| 2、药物和化学试剂 | 第16页 |
| 3、培养基 | 第16页 |
| 4、实验仪器及材料 | 第16页 |
| 5、气体 | 第16页 |
| 6、细胞培养溶液的配制 | 第16-19页 |
| 实验方法 | 第19-22页 |
| 1. 实验溶液的配制 | 第19-20页 |
| 2、神经元培养 | 第20页 |
| 3、神经元OGD损伤 | 第20-21页 |
| 4、神经元活性测定 | 第21页 |
| 5、数据统计 | 第21-22页 |
| 实验结果 | 第22-27页 |
| 1. 不同时间OGD处理后对神经元存活率的影响 | 第22页 |
| 2、酸碱度对原代培养大鼠皮质神经元OGD损伤的影响 | 第22-24页 |
| 3、Mg~(2+)对原代培养大鼠皮质神经元OGD损伤的影响 | 第24-25页 |
| 4、甘氨酸对原代培养大鼠皮质神经元OGD损伤的影响 | 第25-26页 |
| 5、Ca~(2+)对原代培养大鼠皮质神经元OGD损伤的影响 | 第26-27页 |
| 讨论 | 第27-29页 |
| 第一部分小结 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-33页 |
| 第二部分：黄芩苷减轻缺氧缺糖诱导的大鼠皮质神经元损伤并抑制5-脂氧酶激活 | 第33-54页 |
| 引言 | 第33-34页 |
| 材料 | 第34-36页 |
| 1、实验动物 | 第34页 |
| 2、药物和化学试剂 | 第34页 |
| 3、培养基 | 第34页 |
| 4、实验仪器及材料 | 第34-35页 |
| 5、气体 | 第35页 |
| 6、免疫细胞化学溶液 | 第35页 |
| 7、抗体及试剂 | 第35页 |
| 8、[Ca~(2+)]i测定液(mmol/L,pH7.4) | 第35-36页 |
| 实验方法 | 第36-38页 |
| 1、神经元坏死和凋亡检测 | 第36页 |
| 2、神经元免疫细胞化学染色 | 第36-37页 |
| 3、细胞外白三烯含量测定 | 第37页 |
| 4、细胞内钙测定 | 第37页 |
| 5、数据统计 | 第37-38页 |
| 实验结果 | 第38-47页 |
| 1、黄芩苷、咖啡酸和MK-801对神经元OGD损伤的作用 | 第38-41页 |
| 2、黄芩苷、咖啡酸和MK-801对OGD诱导的5-LOX核膜移位的作用 | 第41-43页 |
| 3、黄芩苷、咖啡酸和MK-801对OGD诱导的CysLTs生成的作用 | 第43-45页 |
| 4、黄芩苷、咖啡酸和MK-801对谷氨酸引起的神经元内钙升高的作用 | 第45-47页 |
| 讨论 | 第47-49页 |
| 第二部分小结 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 综述 | 第55-66页 |
| 已发表论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
