第一章 文献综述 | 第1-25页 |
1.1 我国棉花纤维品质现状 | 第9-11页 |
1.2 棉纤维的发育过程 | 第11页 |
1.3 棉纤维发育过程中的内源激素的动态变化 | 第11-13页 |
1.4 棉纤维优势表达或特异表达基因的克隆及功能研究 | 第13-16页 |
1.5 棉花纤维品质改良的基因工程尝试 | 第16-18页 |
1.5.1 对棉花产量及纤维强度的改良 | 第16页 |
1.5.2 通过改变棉纤维中激素含量来改良纤维品质的尝试 | 第16页 |
1.5.3 利用聚羟基丁酸改良纤维的保温性 | 第16-17页 |
1.5.4 利用色素合成酶基因改良棉纤维的色泽 | 第17页 |
1.5.5 利用角蛋白基因改良棉纤维强度 | 第17-18页 |
1.6 RNAI技术简介 | 第18-20页 |
1.7 目的基因:COBRA和BOTERO的研究背景 | 第20-23页 |
1.7.1 COBRA的研究背景 | 第20-22页 |
1.7.2 BOTERO基因的研究背景 | 第22-23页 |
1.8 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
第二章 材料与方法 | 第25-42页 |
2.1 材料 | 第25-28页 |
2.1.1 植物材料 | 第25页 |
2.1.2 质粒和菌株 | 第25页 |
2.1.3 酶和试剂 | 第25页 |
2.1.4 培养基 | 第25-27页 |
2.1.5 引物合成和序列测定 | 第27-28页 |
2.2 方法 | 第28-42页 |
2.2.1 CaCl_2法制备大肠杆菌感受态细胞(用于热击转化) | 第28页 |
2.2.2 一步法制备大肠杆菌和农杆菌感受态细胞(用于热击转化) | 第28页 |
2.2.3 大肠杆菌的转化(热击法): | 第28-29页 |
2.2.4 CaCl_2法制备农杆菌感受态细胞(用于热击转化): | 第29页 |
2.2.5 农杆菌感受态细胞的转化(热击法): | 第29页 |
2.2.6 碱裂解法小量提取质粒DNA | 第29-30页 |
2.2.7 碱裂解法大量提取质粒DNA | 第30页 |
2.2.8 冻融法回收目的基因片段(适合于微量DNA回收) | 第30-31页 |
2.2.9 棉花DNA的提取(酮试剂法) | 第31页 |
2.2.10 棉花DNA的提取(CTAB法) | 第31页 |
2.2.11 棉花叶片RNA的提取 | 第31-32页 |
2.2.12 用Gateway方法构建RNAi载体 | 第32-33页 |
2.2.13 棉花转基因植株胚珠体外培养和酒精诱导 | 第33-34页 |
2.2.14 比色法测定胚珠体外培养后的纤维质量 | 第34页 |
2.2.15 一步法RT-PCR | 第34-35页 |
2.2.16 基因cDNA全长克隆及5’-RACE和3’-RACE反应 | 第35-40页 |
2.2.17 裂殖酵母的转化 | 第40页 |
2.2.18 裂殖酵母的诱导表达 | 第40-41页 |
2.2.19 对诱导表达后裂殖酵母的进行显微镜观察 | 第41-42页 |
第三章 结果与分析 | 第42-59页 |
3.1 陆地棉GHCOBRA和GHBOTERO基因的RNAI载体构建 | 第42-44页 |
3.2 对转基因植株的PCR检测 | 第44-45页 |
3.3 转基因植株的胚珠体外培养和酒精诱导及纤维质量测定 | 第45-47页 |
3.3.1 转基因植株的胚珠体外培养和酒精诱导 | 第45-46页 |
3.3.2 比色法测定胚珠体外诱导后的纤维总量和数据分析 | 第46-47页 |
3.4 陆地棉GHCOBRA的全长CDNA的克隆 | 第47-53页 |
3.4.1 RT-PCR方法克隆GhCOBRA的已知片段 | 第47-48页 |
3.4.2 克隆GhCOBRA的5’-末端和3’末端 | 第48-49页 |
3.4.3 GhCOBRA的序列分析 | 第49-53页 |
3.5 GHCOBRA的植物表达载体构建 | 第53-57页 |
3.5.1 构建中间载体1:pSK-COB | 第53-54页 |
3.5.2 构建中间载体2:pXL | 第54-56页 |
3.5.3 植物表达载体pXL-COB的构建 | 第56-57页 |
3.6 GHCOBRA的裂殖酵母表达载体的构建 | 第57-58页 |
3.7 分析和讨论 | 第58-59页 |
结论及创新点 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
个人简历 | 第66页 |