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利用离体培养技术筛选魔芋软腐病抗源材料的研究

摘要第1-8页
ABSTRACT第8-10页
本文出现的主要缩略词第10-11页
一、文献综述第11-21页
 1. 魔芋软腐病第11-14页
  1.1 魔芋软腐病病害发生危害与传播第11-12页
  1.2 魔芋软腐病病原生物学第12页
  1.3 魔芋软腐病流行原因分析第12-13页
  1.4 魔芋软腐病综合防治第13-14页
 2. 植物离体培养技术与作物育种第14-17页
  2.1 植物组织培养技术的研究进展第14-15页
  2.2 植物组织培养中的形态建成第15页
  2.3 植物组织培养技术的应用第15-16页
  2.4 离体培养技术在抗病突变体筛选方面的应用第16-17页
 3. 诱变与组织培养相结合在植物育种中的应用第17页
  3.1 细胞的辐射敏感性分析第17页
  3.2 体细胞无性系变异与变异体选择第17页
 4. 病原-寄主互作的研究进展第17-20页
  4.1 植物-病原物互作的概念第17-18页
  4.2 植物的抗病性研究第18页
  4.3 植物抗病性中防御酶的作用第18-20页
   4.3.1 过氧化物酶在抗病反应中的作用第19页
   4.3.2 多酚氧化酶在抗病反应中的作用第19页
   4.3.3 超氧化物歧化酶在抗病反应中的作用第19-20页
 5. 本研究的目的与意义第20-21页
二、材料与方法第21-26页
 1. 材料第21页
  1.1 形成愈伤组织的魔芋不同外植体第21页
  1.2 利用甲基磺酸乙酯(EMS)筛选魔芋软腐病抗源材料第21页
  1.3 利用细菌滤液和直接接菌法筛选魔芋软腐病抗源材料第21页
  1.4 提取酶液的再生植株第21页
 2. 方法第21-26页
  2.1 获得最佳的外植体材料第21-23页
   2.1.1 诱导愈伤组织不同外植体的处理第21-22页
   2.1.2 外植体诱导、分化与分化植株生根的培养基第22页
   2.1.3 外植体诱导愈伤组织的培养方法和条件第22-23页
  2.2 魔芋软腐病抗病突变体的筛选第23-24页
   2.2.1 魔芋软腐菌来源第23页
   2.2.2 甲基磺酸乙酯(EMS)诱变剂的配制第23页
   2.2.3 魔芋软腐病病原菌滤液的制备第23页
   2.2.4 魔芋软腐病病原菌菌悬液的配制第23页
   2.2.5 愈伤组织直接接种魔芋软腐病第23-24页
   2.2.6 甲基磺酸乙酯(EMS)诱变处理愈伤组织第24页
   2.2.7 甲基磺酸乙酯(EMS)诱变处理后抗软腐菌材料的初步筛选第24页
   2.2.8 细菌滤液处理愈伤组织后抗软腐病材料的初步筛选第24页
  2.3 同工酶分析第24-26页
   2.3.1 再生植株酶液的提取第24-25页
   2.3.2 过氧化物酶(POD)同工酶分析第25页
   2.3.3 超氧化物歧化酶(SOD)同工酶分析第25页
   2.3.4 多酚氧化酶(PPO)同工酶分析第25-26页
三、结果与分析第26-37页
 1. 获得最佳的外植体材料第26-28页
  1.1 魔芋不同外植体愈伤组织的诱导第26页
  1.2 愈伤组织继代与芽点的分化第26-28页
  1.3 幼苗的生根与移栽第28页
 2. 魔芋抗软腐病材料的筛选第28-34页
  2.1 EMS筛选魔芋抗软腐病的材料第28-30页
   2.1.1 不同EMS浓度诱变后愈伤组织的存活率第28-29页
   2.1.2 不同愈伤组织类型的存活率第29页
   2.1.3 抗软腐病材料的筛选第29-30页
  2.2 细菌滤液筛选魔芋抗软腐病材料第30-31页
  2.3 直接接菌筛选魔芋抗软腐病材料第31-34页
 3. 对获得的再生植株同功酶分析第34-37页
  3.1 过氧化物酶(POD)谱带的变化第34-35页
  3.2 超氧化物歧化酶(SOD)谱带的变化第35-36页
  3.3 多酚氧化酶(PPO)谱带的变化第36-37页
四、结论与讨论第37-41页
 1. 魔芋不同外植体诱导愈伤组织的形成第37页
 2. 魔芋抗病突变体的筛选第37-39页
  2.1 利用EMS筛选魔芋抗软腐病的材料第37-38页
  2.2 利用细菌滤液筛选魔芋抗软腐病的材料第38页
  2.3 直接接菌筛选魔芋抗软腐病的材料第38-39页
 3. 对获得的再生植株同功酶分析第39-40页
 4. 进一步研究设想第40-41页
参考文献第41-45页
附录第45-46页
 附录1 各种培养基组成第45页
 附录2 已发表论文第45-46页
致谢第46页

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