目录 | 第1-6页 |
摘要 | 第6-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-26页 |
1.1 引言 | 第9页 |
1.2 手性化合物的研究意义 | 第9-12页 |
1.3 获得手性化合物的主要方法 | 第12-17页 |
1.3.1.物理法 | 第12-13页 |
1.3.1.1 手性溶剂拆分法 | 第12页 |
1.3.1.2 接种结晶拆分法 | 第12-13页 |
1.3.2 化学法 | 第13-14页 |
1.3.2.1 经典成盐拆分法 | 第13页 |
1.3.2.2 组合拆分 | 第13页 |
1.3.2.3.萃取拆分法 | 第13-14页 |
1.3.3 生物法 | 第14-15页 |
1.3.3.1 微生物法 | 第15页 |
1.3.3.2 酶法 | 第15页 |
1.3.4 色谱法 | 第15-16页 |
1.3.4.1 气相色谱法 | 第16页 |
1.3.4.2 高效液相色谱法 | 第16页 |
1.3.4.3 模拟移动床色谱法 | 第16页 |
1.3.5.膜法 | 第16-17页 |
1.3.5.1 液体膜拆分 | 第16-17页 |
1.3.5.2 手性固定膜拆分 | 第17页 |
1.4 微生物制备手性化合物的特点及优势 | 第17-18页 |
1.5 微生物全细胞生物不对称合成4-氯-3-羟基丁酸乙酯 | 第18-24页 |
1.5.1 微生物全细胞生物不对称合成4-氯-3-羟基丁酸乙酯的原理 | 第18-19页 |
1.5.2 影响微生物全细胞生物不对称合成的因素 | 第19-24页 |
1.5.2.1 微生物种类 | 第19页 |
1.5.2.2 微生物细胞的形式 | 第19-22页 |
1.5.2.3 微生物细胞的培养条件 | 第22页 |
1.5.2.4 辅助底物及辅酶再生 | 第22页 |
1.5.2.5 酶的激活剂或抑制剂 | 第22-23页 |
1.5.2.6 反应体系 | 第23-24页 |
1.5.2.7 底物浓度及添加方式 | 第24页 |
1.6 拟研究的内容和方向 | 第24-26页 |
第二章 材料与方法 | 第26-33页 |
2.1 实验材料 | 第26-28页 |
2.1.1 质粒与菌种 | 第26-27页 |
2.1.1.1 酵母菌株及培养基 | 第26页 |
2.1.1.2 酵母菌株培养方法 | 第26页 |
2.1.1.3 大肠杆菌菌种质粒及培养基 | 第26页 |
2.1.1.4 试剂 | 第26-27页 |
2.1.2 工具酶和试剂盒 | 第27页 |
2.1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
2.2 实验及分析方法 | 第28-33页 |
2.2.1 分子克隆相关实验 | 第28页 |
2.2.2 菌体浓度的测定 | 第28页 |
2.2.3 产物得率及e.e.值分析方法 | 第28-29页 |
2.2.4 细胞超声波破碎及胞内蛋白的提取 | 第29页 |
2.2.5 蛋白浓度的测定 | 第29-30页 |
2.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第30-31页 |
2.2.7 羰基还原酶及葡萄糖脱氢酶酶活测定 | 第31页 |
2.2.8 还原糖的测定方法 | 第31-33页 |
第三章 微生物菌种的筛选及不对称合成(S)-CHBE | 第33-45页 |
3.1 引言 | 第33页 |
3.2 材料与方法 | 第33页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第33页 |
3.2.1.1 菌种、培养基与培养方法 | 第33页 |
3.2.1.2 试剂 | 第33页 |
3.2.2 方法 | 第33页 |
3.2.2.1 还原方法 | 第33页 |
3.3.2.2 分析方法 | 第33页 |
3.3 结果和讨论 | 第33-44页 |
3.3.1 菌种的筛选 | 第33-34页 |
3.3.2 木兰假丝酵母生长时间对产物得率及e.e.值的影响 | 第34-36页 |
3.3.3 木兰假丝酵母保存时间对产物得率及e.e.值的影响 | 第36页 |
3.3.4 培养条件及反应条件对产物得率及e.e.值的影响 | 第36-37页 |
3.3.5 辅助底物及其添加量对产物得率及e.e.值的影响 | 第37-40页 |
3.3.6 转化时间对产物得率及e.e值的影响 | 第40页 |
3.3.7 温度对产物得率及e.e.值的影响 | 第40-41页 |
3.3.8 pH值对产物得率及ee值的影响 | 第41-42页 |
3.3.9 底物的加入量对产物得率及e.e.值的影响 | 第42页 |
3.3.10 底物分批加入与一次性加入对产物得率及e.e.值的影响 | 第42-43页 |
3.3.11 细胞量对产物得率及e.e.值的影响 | 第43页 |
3.3.12 烯丙醇对产物得率及e.e.值的影响 | 第43-44页 |
3.4 小结 | 第44-45页 |
第四章 两相体系中木兰假丝酵母不对称还原制备(S)-CHBE | 第45-53页 |
4.1 引言 | 第45-46页 |
4.2 材料与方法 | 第46页 |
4.2.1 材料 | 第46页 |
4.2.1.1 试剂 | 第46页 |
4.2.1.2 菌种 | 第46页 |
4.2.1.3 培养基 | 第46页 |
4.2.2 方法 | 第46页 |
4.2.2.1 菌体培养方法 | 第46页 |
4.2.2.2 还原方法 | 第46页 |
4.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
4.3.1 单相和水/乙酸丁酯两相体系的比较 | 第46-47页 |
4.3.2 有机溶剂对木兰假丝酵母不对称还原的影响 | 第47-48页 |
4.3.3 水相与有机溶剂相体积比对产物得率及e.e.值的影响 | 第48页 |
4.3.4 转速对产物得率及e.e.值的影响 | 第48-49页 |
4.3.5 葡萄糖浓度对产物得率及e.e.值的影响 | 第49页 |
4.3.6 细胞量对产物得率及e.e.值的影响 | 第49-50页 |
4.3.7 温度对产物得率及e.e.值的影响 | 第50-51页 |
4.3.8 底物加入方式对产物得率及e.e.值的影响 | 第51-52页 |
4.4 小结 | 第52-53页 |
第五章 热处理木兰假丝酵母制备光学纯(S)-CHBE | 第53-62页 |
5.1 引言 | 第53页 |
5.2 材料与方法 | 第53-54页 |
5.2.1 材料 | 第53页 |
5.2.1.1 试剂 | 第53页 |
5.2.1.2 菌种 | 第53页 |
5.2.1.3 培养基 | 第53页 |
5.2.2 方法 | 第53-54页 |
5.2.2.1 菌体培养方法 | 第53页 |
5.2.2.2 丙酮干细胞及空气干细胞的制备 | 第53页 |
5.2.2.3 还原方法 | 第53-54页 |
5.3 结果和讨论 | 第54-60页 |
5.3.1 加热对产物得率及e.e.值的影响 | 第54-55页 |
5.3.2 反应前加热温度对产物得率及e.e.值的影响 | 第55-56页 |
5.3.3 加热时间对产物得率及e.e.值的影响 | 第56页 |
5.3.4 底物浓度对产物得率及e.e.值的影响 | 第56-57页 |
5.3.5 葡萄糖浓度对产物得率及e.e.值的影响 | 第57页 |
5.3.6 还原反应温度对产物得率及e.e.值的影响 | 第57-59页 |
5.3.7 细胞量对产物得率及e.e.值的影响 | 第59页 |
5.3.8 两相体系中的还原反应 | 第59-60页 |
5.4 小结 | 第60-62页 |
第六章 重组大肠杆菌的构建及不对称还原制备(S)-CHBE | 第62-77页 |
6.1 引言 | 第62页 |
6.2 材料和方法 | 第62-67页 |
6.2.1 菌种、质粒、培养基与培养方法 | 第62-63页 |
6.2.2 工具酶和试剂盒 | 第63页 |
6.2.3 引物 | 第63页 |
6.2.4 羰基还原酶DNA的获得与PCR扩增 | 第63页 |
6.2.5 克隆载体的构建 | 第63-64页 |
6.2.6 表达载体的构建及酶切鉴定 | 第64-66页 |
6.2.7 E. coli M15(pQE30-gdh0310)的构建 | 第66页 |
6.2.8 酶活测定 | 第66页 |
6.2.9 还原方法 | 第66-67页 |
6.3 结果与讨论 | 第67-75页 |
6.3.1 培养基的选择 | 第67页 |
6.3.2 培养温度 | 第67-68页 |
6.3.3 诱导条件 | 第68-70页 |
6.3.3.1 诱导温度 | 第68-69页 |
6.3.3.2 诱导剂IPTG的加入量 | 第69页 |
6.3.3.3 诱导后的发酵时间 | 第69-70页 |
6.3.4 各种菌株中酶活的比较 | 第70页 |
6.3.5 E. coliM15(pQE30-car)不对称还原COBE | 第70-71页 |
6.3.6 底物浓度对单菌转化及混菌转化产物得率的影响 | 第71-72页 |
6.3.7 E coliM15(pQE30-car)及E. coliM15(pQE30-gdh0310)质量比对产物得率的影响 | 第72-73页 |
6.3.8 温度对产物得率的影响 | 第73页 |
6.3.9 单菌培养及混菌培养时NADPH的浓度的变化 | 第73-74页 |
6.3.10 两相体系中的还原反应 | 第74-75页 |
6.4 小结 | 第75-77页 |
第七章 结论 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-85页 |
致谢 | 第85页 |