| 中文摘要 | 第11-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-26页 |
| 1 笼状呫吨酮类化学成分分类 | 第14-15页 |
| 1.1 含A环的笼状呫吨酮类 | 第14-15页 |
| 1.2 无A环的笼状呫吨酮类 | 第15页 |
| 2 笼状呫吨酮类化学成分的生物活性 | 第15-22页 |
| 2.1 抗肿瘤作用及其作用机制 | 第15-20页 |
| 2.2 抗炎作用 | 第20-21页 |
| 2.3 抗菌及抗病毒作用 | 第21-22页 |
| 3.炎症信号通路的研究进展 | 第22-25页 |
| 3.1 NF-κB信号通路 | 第22页 |
| 3.2 MAPKs信号通路 | 第22-23页 |
| 3.3 酪氨酸激酶-转录因子(JAK/STAT)信号通路 | 第23页 |
| 3.4 转录因子激活蛋白1(AP-1) | 第23-24页 |
| 3.5 Toll-Like Receptor(TOLL样受体)信号通路 | 第24-25页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第25-26页 |
| 试验一 先导化合物neobractatin的确定及大苞藤黄中neobractatin提取工艺优化 | 第26-42页 |
| 1.1 材料 | 第26页 |
| 1.1.1 试验药材 | 第26页 |
| 1.1.2 试验仪器及试剂 | 第26页 |
| 1.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 1.2.1.笼状呫吨酮类先导化合物的确定 | 第26-27页 |
| 1.2.2 Neobractatin因素水平的建立 | 第27页 |
| 1.2.3 Neobractatin超声提取工艺 | 第27页 |
| 1.2.4 标准曲线的绘制 | 第27-28页 |
| 1.2.5 色谱条件的优化 | 第28页 |
| 1.2.6 方法学考察 | 第28-29页 |
| 1.3 结果与分析 | 第29-39页 |
| 1.3.1 .笼状呫吨酮类化合物neobractatin先导物的确定 | 第29-33页 |
| 1.3.2 响应面模型的建立及显著性分析 | 第33-35页 |
| 1.3.3 测定条件的影响与优化 | 第35-36页 |
| 1.3.4 方法学评价 | 第36-39页 |
| 1.4 讨论 | 第39-41页 |
| 1.5 小结 | 第41-42页 |
| 1.5.1 抗炎先导化合物的确定 | 第41页 |
| 1.5.2 响应面工艺优化 | 第41页 |
| 1.5.3 高效液相色谱法检测neobractatin的含量 | 第41-42页 |
| 试验二 Neobractatin对 LPS诱导的RAW264.7 细胞中细胞因子分泌的影响研究 | 第42-53页 |
| 2.1 材料 | 第42-43页 |
| 2.1.1 细胞 | 第42页 |
| 2.1.2 药品和试剂 | 第42-43页 |
| 2.1.3 仪器 | 第43页 |
| 2.1.4 常用溶液及其配制 | 第43页 |
| 2.2 方法 | 第43-45页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第43页 |
| 2.2.2 Neobractatin溶液的制备 | 第43页 |
| 2.2.3 细胞活力的检测 | 第43-44页 |
| 2.2.4 LPS诱导RAW264.7 细胞炎症模型的建立及取样 | 第44-45页 |
| 2.2.5 细胞因子含量的测定 | 第45页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第45页 |
| 2.3 结果与分析 | 第45-51页 |
| 2.3.1 Neobractatin细胞毒性的评价 | 第45-47页 |
| 2.3.2 Neobractatin 对 LPS 诱导的 RAW264.7 炎症细胞中细胞因子含量的影 | 第47-51页 |
| 2.4 讨论 | 第51-52页 |
| 2.5 小结 | 第52-53页 |
| 试验三 Neobractatin对 LPS诱导的RAW264.7 细胞中炎症介质的影响研究 | 第53-65页 |
| 3.1 材料 | 第53-54页 |
| 3.1.1 细胞 | 第53页 |
| 3.1.2 药品与试剂 | 第53-54页 |
| 3.1.3 仪器 | 第54页 |
| 3.2 方法 | 第54-58页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第54页 |
| 3.2.2 Neobractatin溶液的制备 | 第54页 |
| 3.2.3 LPS诱导RAW264.7细胞炎症模型的建立及取样 | 第54-55页 |
| 3.2.4 LPS 对炎症细胞上清液中 NO、PGE 2 含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.5 NO含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.6 PGE2含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.7 i NOS、COX-2 基因表达水平的检测 | 第55-56页 |
| 3.2.8 COX-2、i NOS蛋白表达水平的检测 | 第56-57页 |
| 3.2.9 数据的统计与分析 | 第57-58页 |
| 3.3 结果与分析 | 第58-62页 |
| 3.3.1 .Neobractatin对 LPS诱导的RAW264.7 细胞中NO含量的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.2.Neobractatin 对 LPS 诱导的 RAW264.7 细胞中 PGE_2含量的影响 | 第59页 |
| 3.3.3 Neobractatin对 LPS诱导的RAW264.7 炎症细胞中i NOS、COX-2 基因表达量的影响 | 第59-61页 |
| 3.3.4 Neobractatin对 LPS诱导的RAW264.7 炎症细胞中i NOS、COX-2 蛋白表达量的影响 | 第61-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-64页 |
| 3.5 小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 附录 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第77-78页 |
