| 中文摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 第一部分 睡眠剥夺对大鼠心脏及其应激水平的影响 | 第14-32页 |
| 1.材料 | 第14-15页 |
| ·实验动物 | 第14页 |
| ·主要试剂 | 第14页 |
| ·主要实验仪器 | 第14-15页 |
| 2.方法 | 第15-21页 |
| ·实验分组 | 第15页 |
| ·睡眠剥夺模型的建立 | 第15-16页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心电图监测 | 第16页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠血清学指标ACTH、TSH及CORT含量测定 | 第16页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织氧化应激指标的测定 | 第16-21页 |
| ·标本的制备 | 第16页 |
| ·大鼠心肌组织GSH含量测定 | 第16-17页 |
| ·大鼠心肌组织中GSH-Px活力的测定 | 第17-18页 |
| ·大鼠心肌组织MDA含量测定 | 第18-19页 |
| ·大鼠心肌组织SOD活性的测定 | 第19-21页 |
| ·统计学方法 | 第21页 |
| 3.结果 | 第21-27页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠一般状态 | 第21-22页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠标准肢体Ⅱ导联心电图监测结果 | 第22-23页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠血清学指标ACTH、TSH及CORT含量测定结果 | 第23-24页 |
| ·ACTH含量测定结果 | 第23页 |
| ·TSH含量测定结果 | 第23-24页 |
| ·CORT含量测定结果 | 第24页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织氧化应激指标的测定结果 | 第24-27页 |
| ·GSH含量测定结果 | 第24-25页 |
| ·GSH-Px活性测定结果 | 第25页 |
| ·MDA含量测定结果 | 第25-26页 |
| ·SOD活性测定结果 | 第26-27页 |
| 4.讨论 | 第27-31页 |
| 5.结论 | 第31-32页 |
| 第二部分 睡眠剥夺与大鼠心脏炎症反应的关系 | 第32-50页 |
| 1.材料 | 第32页 |
| ·实验动物 | 第32页 |
| ·主要实验试剂 | 第32页 |
| ·主要实验仪器 | 第32页 |
| 2.方法 | 第32-36页 |
| ·实验分组 | 第32页 |
| ·睡眠剥夺模型的建立 | 第32页 |
| ·免疫组织化学方法观察睡眠剥夺后大鼠心肌组织CRP、ICAM-1、VCAM-1、IL-1β、IL-6的蛋白表达情况 | 第32-36页 |
| ·免疫组织化学法的概念及基本原理 | 第32-33页 |
| ·标本的制备 | 第33页 |
| ·主要试剂配制 | 第33-35页 |
| ·免疫组化操作流程 | 第35-36页 |
| ·统计学方法 | 第36页 |
| 3.结果 | 第36-43页 |
| ·结果分析方法 | 第36页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织CRP表达结果 | 第36-38页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织ICAM-1表达结果 | 第38-39页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织VCAM-1表达结果 | 第39-40页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织IL-6表达结果 | 第40-41页 |
| ·睡眠剥夺后大鼠心肌组织IL-1β表达结果 | 第41-43页 |
| 4.讨论 | 第43-48页 |
| ·睡眠剥夺对大鼠心肌组织CRP的影响 | 第43-44页 |
| ·睡眠剥夺对大鼠心肌组织ICAM-1、VCAM-1的影响 | 第44-46页 |
| ·睡眠剥夺对大鼠心肌组织IL-6、IL-1β的影响 | 第46-48页 |
| 5 结论 | 第48-50页 |
| 第三部分 睡眠剥夺致大鼠心律失常机制研究 | 第50-74页 |
| 1.材料 | 第50页 |
| ·实验动物 | 第50页 |
| ·主要试剂 | 第50页 |
| ·主要仪器设备 | 第50页 |
| 2.方法 | 第50-60页 |
| ·实验分组 | 第50页 |
| ·睡眠剥夺模型的建立 | 第50页 |
| ·荧光定量PCR法测定睡眠剥夺后大鼠心肌组织K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3钾离子通道基因mRNA表达 | 第50-54页 |
| ·标本的制备 | 第50-51页 |
| ·Real-time PCR基本原理 | 第51-52页 |
| ·荧光定量PCR相关参数的基本概念 | 第52页 |
| ·总RNA提取: | 第52-53页 |
| ·cDNA合成: | 第53页 |
| ·引物设计 | 第53-54页 |
| ·荧光定量PCR | 第54页 |
| ·Western Blot蛋白免疫印迹法分析睡眠剥夺后大鼠心肌组织K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3钾离子通道蛋白的表达情况 | 第54-60页 |
| ·标本的制备 | 第54页 |
| ·Western Blot基本原理 | 第54-55页 |
| ·Western Blot主要溶液配制 | 第55-58页 |
| ·Western Blot主要操作步骤 | 第58-60页 |
| ·统计学方法 | 第60页 |
| 3.结果 | 第60-67页 |
| ·荧光定量PCR法测定睡眠剥夺后大鼠心肌组织电压依赖性钾离子通道K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3基因mRNA的表达结果 | 第60-64页 |
| ·大鼠心肌组织K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3离子通道基因扩增结果 | 第60-61页 |
| ·荧光定量PCR结果计算公式 | 第61-62页 |
| ·大鼠心肌组织K_v1.5钾离子通道基因mRNA的表达情况 | 第62页 |
| ·大鼠心肌组织K_v2.1钾离子通道基因mRNA的表达情况 | 第62-63页 |
| ·大鼠心肌组织K_v4.3钾离子通道基因mRNA的表达情况 | 第63-64页 |
| ·Western Blot法分析睡眠剥夺后大鼠心肌组织K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3电压依赖性钾离子通道蛋白的表达情况 | 第64-67页 |
| ·大鼠心肌组织K_v1.5、K_v2.1、K_v4.3离子通道蛋白表达结果 | 第64页 |
| ·结果分析方法 | 第64-65页 |
| ·大鼠心肌组织K_v1.5钾离子通道蛋白表达结果分析 | 第65页 |
| ·大鼠心肌组织K_v2.1钾离子通道蛋白表达结果分析 | 第65-66页 |
| ·大鼠心肌组织K_v4.3钾离子通道蛋白表达结果分析 | 第66-67页 |
| 4.讨论 | 第67-72页 |
| ·K_v1.5钾离子道通 | 第69-70页 |
| ·K_v2.1钾离子道通 | 第70-71页 |
| ·K_v4.3钾离子道通 | 第71-72页 |
| 5.结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-83页 |
| 综述——睡眠剥夺对心血管系统的影响及其研究进展 | 第83-92页 |
| 1 睡眠剥夺的基本概念及分类 | 第83页 |
| 2 睡眠剥夺的流行病学研究 | 第83-85页 |
| ·睡眠剥夺对机体功能的影响 | 第83-84页 |
| ·睡眠剥夺对心血管疾病影响的流行病学研究 | 第84页 |
| ·睡眠剥夺对其他系统及器官功能影响的流行病学研究 | 第84-85页 |
| 3 睡眠剥夺对心血管系统的作用 | 第85-87页 |
| ·睡眠剥夺对应激反应及炎症因子的影响 | 第85-86页 |
| ·睡眠剥夺对自主神经调节功能以及激素水平和血液动力学的影响 | 第86-87页 |
| ·睡眠剥夺对心血管系统结构及功能的影响 | 第87页 |
| 4 睡眠剥夺在心血管领域研究的问题及展望 | 第87-92页 |
| 附录——缩略语词汇表 | 第92-93页 |
| 攻读博士期间发表论文情况 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
