摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-13页 |
1 前言 | 第13-31页 |
·研究现状 | 第13-25页 |
·卡拉胶的结构 | 第13-14页 |
·卡拉胶的降解技术 | 第14-15页 |
·卡拉胶的化学修饰方法 | 第15-16页 |
·卡拉胶及其衍生物的生物活性 | 第16-18页 |
·影响卡拉胶生物活性的因素 | 第18-19页 |
·单纯疱疹病毒 | 第19-21页 |
·HSV 的防治方法 | 第21-25页 |
·研究内容 | 第25-26页 |
参考文献 | 第26-31页 |
2 κ-卡拉胶寡糖及其衍生物的制备 | 第31-53页 |
·MCA-2 发酵产酶条件优化 | 第31-32页 |
·实验材料与仪器 | 第31页 |
·实验方法 | 第31-32页 |
·卡拉胶降解酶的作用条件研究 | 第32-33页 |
·实验材料与仪器 | 第32页 |
·实验方法 | 第32-33页 |
·κ-卡拉胶寡糖的制备 | 第33-35页 |
·实验材料与仪器 | 第33-34页 |
·实验方法 | 第34-35页 |
·Κ-卡拉胶寡糖衍生物的制备 | 第35-37页 |
·实验材料与仪器 | 第35页 |
·实验方法 | 第35-37页 |
·甘露寡糖及其衍生物的制备 | 第37-38页 |
·实验材料与仪器 | 第37-38页 |
·实验方法 | 第38页 |
·结果与讨论 | 第38-50页 |
·产酶条件优化 | 第38-40页 |
·MCA-2 的生长曲线 | 第40-41页 |
·卡拉胶酶作用条件研究 | 第41-42页 |
·硫酸基团标准曲线 | 第42-43页 |
·κ-卡拉胶寡糖的乙醇分级沉淀 | 第43页 |
·κ-卡拉胶寡糖的纯化 | 第43-45页 |
·κ-卡拉胶寡糖磺化衍生物的最佳制备方法 | 第45页 |
·κ-卡拉胶寡糖脱硫酸基衍生物的最佳制备方法 | 第45-48页 |
·甘露寡糖的乙醇分级沉淀 | 第48页 |
·甘露寡糖的纯化 | 第48-50页 |
·甘露寡糖磺化衍生物的制备 | 第50页 |
·小结 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-53页 |
3 κ-卡拉胶寡糖及其衍生物的性质分析 | 第53-65页 |
·实验材料与仪器 | 第53页 |
·实验材料 | 第53页 |
·实验仪器 | 第53页 |
·实验试剂 | 第53页 |
·实验方法 | 第53-56页 |
·分子量测定 | 第53-54页 |
·硫含量测定 | 第54页 |
·硫酸取代度计算 | 第54页 |
·溶解度测定 | 第54页 |
·3,6–内醚–半乳糖含量的测定 | 第54-55页 |
·半乳糖含量测定 | 第55-56页 |
·红外光谱测定 | 第56页 |
·结果与讨论 | 第56-63页 |
·分子量测定 | 第56-58页 |
·硫含量测定 | 第58页 |
·溶解度测定 | 第58-60页 |
·3,6–内醚–半乳糖、半乳糖含量的测定 | 第60-61页 |
·红外光谱图分析 | 第61-63页 |
·小结 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-65页 |
4 κ-卡拉胶寡糖及其衍生物抗病毒活性研究 | 第65-85页 |
·实验材料与仪器 | 第65-66页 |
·药品与试剂 | 第65-66页 |
·细胞株 | 第66页 |
·病毒 | 第66页 |
·实验仪器 | 第66页 |
·实验方法 | 第66-69页 |
·样品溶液制备 | 第66-67页 |
·HSV–1病毒的增殖与感染性测定 | 第67页 |
·细胞毒性实验 | 第67页 |
·卡拉胶寡糖及其衍生物对病毒的作用 | 第67-69页 |
·血浆制备 | 第69页 |
·部分凝血活酶时间(t APTT)的测定 | 第69页 |
·凝血酶原时间(t PT)的测定 | 第69页 |
·结果与讨论 | 第69-82页 |
·Vero细胞中HSV-1病毒TCID_(50)的测定 | 第69-70页 |
·卡拉胶寡糖对细胞的毒性作用 | 第70-72页 |
·卡拉胶寡糖及其衍生物的抗HSV–1病毒活性 | 第72-79页 |
·卡拉胶寡糖及其衍生物抗凝血机理研究 | 第79-82页 |
·小结 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-85页 |
5 结语 | 第85-86页 |
6 创新点 | 第86页 |
7 后期工作设想 | 第86-87页 |
8 致谢 | 第87-88页 |
9 硕士期间发表论文 | 第88页 |