| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第8-15页 |
| 1 研究背景 | 第8-14页 |
| ·HCMV的流行病学 | 第8页 |
| ·人巨细胞病毒的结构 | 第8-9页 |
| ·人巨细胞病毒基因组 | 第9-10页 |
| ·病毒生活周期及病毒蛋白表达 | 第10-13页 |
| ·HCMV病毒UL49基因的研究现状 | 第13-14页 |
| 2 研究目的 | 第14页 |
| 3 研究思路 | 第14-15页 |
| 第二章 实验材料、主要仪器与试剂和试剂配制 | 第15-19页 |
| 1 实验材料、主要仪器与试剂 | 第15-16页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·细胞和病毒 | 第15-16页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| 2 试剂配制 | 第16-19页 |
| ·细胞培养试剂 | 第16-17页 |
| ·凝胶电泳溶液配制 | 第17-18页 |
| ·Western Blot溶液配制 | 第18页 |
| ·其他试剂 | 第18-19页 |
| 第三章 HCMV UL49基因表达时相 | 第19-35页 |
| 1 前言 | 第19页 |
| 2 技术路线 | 第19-20页 |
| 3 实验内容与方法 | 第20-27页 |
| ·HCMV病毒培养与鉴定 | 第20-23页 |
| ·HCMV UL49基因mRNA表达时相检测 | 第23-25页 |
| ·HCMV UL49基因编码蛋白表达时相检测 | 第25-27页 |
| 4 结果与分析 | 第27-32页 |
| ·病毒培养与鉴定 | 第27-29页 |
| ·UL49基因mRNA表达时相 | 第29-31页 |
| ·UL49基因编码蛋白表达时相 | 第31-32页 |
| 5 讨论 | 第32-35页 |
| ·HCMV感染的鉴定 | 第32-33页 |
| ·HCMV-Towne株病毒滴度测定方法 | 第33页 |
| ·UL49基因表达时相 | 第33-35页 |
| 第四章 pUL49蛋白下调对IE2-86、gB、pp28蛋白的影响 | 第35-48页 |
| 1 前言 | 第35页 |
| 2 技术路线 | 第35-36页 |
| 3 实验内容与方法 | 第36-40页 |
| ·检测EGS对UL49基因表达的抑制作用 | 第36-39页 |
| ·EGS抑制病毒生长曲线测定 | 第39页 |
| ·EGS对IE2、gB、pp28蛋白表达影响 | 第39-40页 |
| 4 结果与分析 | 第40-46页 |
| ·EGS对UL49基因表达的抑制 | 第40-43页 |
| ·EGS能有效抑制病毒生长 | 第43-44页 |
| ·pUL49蛋白下调对IE2、pp28、gB蛋白的影响 | 第44-46页 |
| 5 讨论 | 第46-48页 |
| ·EGS技术 | 第46页 |
| ·pUL49蛋白与IE2-86蛋白 | 第46-47页 |
| ·pUL49蛋白与gB蛋白 | 第47页 |
| ·pUL49蛋白与pp28蛋白 | 第47-48页 |
| 第五章 pUL49蛋白对病毒DNA复制的影响 | 第48-62页 |
| 1 前言 | 第48-50页 |
| ·细胞DNA含量与病毒复制 | 第48-49页 |
| ·细胞内病毒DNA定量 | 第49-50页 |
| 2 技术路线 | 第50页 |
| 3 实验方法 | 第50-55页 |
| ·细胞周期分析pUL49蛋白在病毒DNA复制中的功能 | 第50-51页 |
| ·荧光定量PCR分析pUL49蛋白下调后,病毒总DNA量差异 | 第51-55页 |
| 4 结果分析 | 第55-59页 |
| ·细胞周期分析pUL49蛋白在病毒DNA复制中的功能 | 第55-57页 |
| ·pUL49蛋白下调对病毒总DNA量无影响 | 第57-59页 |
| 5 讨论 | 第59-62页 |
| 第六章 结论和展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 在校期间发表论文 | 第70-71页 |
| 附录(Appendix) | 第71-72页 |
| 缩写词中英文对照 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
