中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-19页 |
研究现状、成果 | 第13-17页 |
研究目的和方法 | 第17-19页 |
一、持续高糖、波动高糖及艾塞那肽干预对HGMC生长的影响 | 第19-28页 |
1.1 实验内容及实验方法 | 第19-23页 |
1.1.1 实验对象及来源 | 第19页 |
1.1.2 实验耗材及器械 | 第19-20页 |
1.1.3 实验所用药品及试剂 | 第20页 |
1.1.4 需配制的试剂 | 第20-21页 |
1.1.5 实验步骤 | 第21-23页 |
1.2 实验结果(HGMC细胞的形态和生长状态) | 第23-25页 |
1.2.1 常规普通RPMI1640培养基(糖浓度11.1mmol/L)培养下的HGMC | 第23-24页 |
1.2.2 六种不同培养条件培养后的HGMC | 第24-25页 |
1.3 实验讨论 | 第25-26页 |
1.4 实验小结 | 第26-28页 |
二、持续高糖、波动高糖及艾塞那肽干预对HGMCbcl-2的影响 | 第28-41页 |
2.1 实验内容及实验方法 | 第28-36页 |
2.1.1 实时荧光定量PCR法(RT-PCR法)检测N组、H组、F组、NG组、HG组、FG组6组bcl-2mRNA的相对表达量 | 第28-31页 |
2.1.2 Western Blot法(WB法)检测N组、H组、F组、NG组、HG组、FG组6组bcl-2的相对表达量 | 第31-36页 |
2.2 实验结果 | 第36-39页 |
2.2.1 实时荧光定量PCR法(RT-PCR法)检测N组、H组、F组、NG组、HG组、FG组6组bcl-2mRNA的相对表达量 | 第36-37页 |
2.2.2 Western Blot法(WB法)检测N组、H组、F组、NG组、HG组、FG组6组bcl-2的相对表达量 | 第37-39页 |
2.3 实验讨论 | 第39-40页 |
2.4 实验小结 | 第40-41页 |
结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-49页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
综述 | 第50-60页 |
综述参考文献 | 第55-60页 |
致谢 | 第60-62页 |
个人简历 | 第62页 |