中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第10-26页 |
1.1 蛋白质糖基化修饰概述 | 第10-13页 |
1.1.1 蛋白质糖基化修饰的重要意义 | 第10-12页 |
1.1.2 蛋白质糖基化修饰类型 | 第12-13页 |
1.2 蛋白质糖基化修饰的研究方法与结构解析技术 | 第13-18页 |
1.2.1 糖蛋白/糖肽的分离富集方法 | 第13-16页 |
1.2.2 生物质谱技术 | 第16-18页 |
1.3 蛋白质糖基化研究的挑战 | 第18-19页 |
1.4 完整糖肽研究进展 | 第19-22页 |
1.4.1 完整糖肽的质谱数据分析 | 第20页 |
1.4.2 完整糖肽的质谱碎裂模式 | 第20-21页 |
1.4.3 完整糖肽的串级质谱碰撞能量参数优化 | 第21-22页 |
1.5 串级质谱碰撞能量参数优化在完整糖肽研究中的应用 | 第22-23页 |
1.6 本论文的选题意义与创新性 | 第23-26页 |
1.6.1 本论文的选题意义 | 第23-24页 |
1.6.2 本论文的创新性 | 第24-26页 |
第2章 应用 Hybrid Quadrupole Orbitrap 质谱研究一种新合成材料对糖肽的富集效果 | 第26-48页 |
2.1 前言 | 第26-27页 |
2.2 实验部分 | 第27-33页 |
2.2.1 主要实验原料、仪器及装置 | 第27-29页 |
2.2.2 脯氨酸-天冬氨酸二肽聚合物修饰介孔二氧化硅材料 | 第29-30页 |
2.2.3 标准干扰模型样品的酶解 | 第30页 |
2.2.4 酶解后样品的脱盐过程 | 第30-31页 |
2.2.5 酶解后样品中糖肽的分离富集 | 第31-32页 |
2.2.6 Hybrid Quadrupole Orbitrap 质谱检测和分析过程 | 第32-33页 |
2.3 结果与讨论 | 第33-47页 |
2.3.1 poly-PD@SiO2 材料的糖肽富集性能 | 第33-34页 |
2.3.2 进样溶剂对质谱检测结果的影响 | 第34-35页 |
2.3.3 最佳检测浓度的选择 | 第35-36页 |
2.3.4 ploy-PD@SiO2 糖肽富集条件的优化 | 第36-40页 |
2.3.5 Ploy-PD@SiO2 富集糖肽的结构解析 | 第40-45页 |
2.3.6 比较 ploy-PD@SiO2 和 HILIC 小柱对糖肽的富集效果 | 第45-47页 |
2.4 本章小结 | 第47-48页 |
第3章 应用 Stepped NCE 串级质谱法研究完整糖肽 | 第48-69页 |
3.1 前言 | 第48-49页 |
3.2 实验部分 | 第49-55页 |
3.2.1 主要实验原料、装置及仪器 | 第49-51页 |
3.2.2 人血清样品总蛋白浓度的测定 | 第51-52页 |
3.2.3 糖蛋白样品的酶解 | 第52-53页 |
3.2.4 HILIC小柱富集完整糖肽 | 第53-54页 |
3.2.5 Hybrid Quadrupole Orbitrap MS/MS 质谱分析过程 | 第54-55页 |
3.2.6 数据处理过程 | 第55页 |
3.3 结果与讨论 | 第55-68页 |
3.3.1 HILIC小柱对完整糖肽的富集效果 | 第55-58页 |
3.3.2 典型糖肽在不同HCD碰撞能量下的碎裂行为 | 第58-61页 |
3.3.3 完整糖肽在不同HCD碰撞能量下的碎裂行为 | 第61-66页 |
3.3.4 应用 Stepped NCE 串级质谱法分析完整糖肽 | 第66-67页 |
3.3.5 Stepped NCE 串级质谱法应用于人血清糖基化鉴定 | 第67-68页 |
3.4 本章小结 | 第68-69页 |
第4章 结论与展望 | 第69-71页 |
4.1 结论 | 第69-70页 |
4.2 展望 | 第70-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-80页 |
攻读硕士期间获得的与学位论文相关的科研成果 | 第80页 |