| 缩略语表 | 第9-11页 |
| 中文摘要 | 第11-16页 |
| ABSTRACT | 第16-21页 |
| 前言 | 第22-24页 |
| 文献回顾 | 第24-31页 |
| 第一部分 EA预处理诱导的LTD是介导脑缺血耐受的神经学基础 | 第31-44页 |
| 实验一 EA预处理诱导dHPC CA3-CA1在体LTD | 第31-36页 |
| 1 材料 | 第31-33页 |
| 1.1 实验动物 | 第31页 |
| 1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
| 2 方法 | 第33-35页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第33页 |
| 2.2 在体电生理记录 | 第33-35页 |
| 2.3 EA预处理模型 | 第35页 |
| 2.4 统计分析 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-36页 |
| 实验二 EA预处理通过dHPC CA3-CA1在体LTD介导脑缺血耐受 | 第36-42页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 实验动物 | 第36页 |
| 1.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 1.3 实验试剂 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-41页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第37-38页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第38页 |
| 2.3 小鼠全脑缺血模型 | 第38页 |
| 2.4 NeuN染色及阳性细胞计数 | 第38-40页 |
| 2.5 FJB染色及阳性细胞计数 | 第40-41页 |
| 2.6 统计分析 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-42页 |
| 讨论 | 第42-44页 |
| 第二部分 GABA能神经元CB_1R介导EA预处理诱导的dHPC CA3-CA1在体LTD和缺血耐受 | 第44-58页 |
| 实验三 CB_1R拮抗剂AM281阻断EA预处理诱导的dHPC CA3-CA1在体LTD | 第45-47页 |
| 1 材料 | 第45页 |
| 1.1 实验动物 | 第45页 |
| 1.2 实验仪器 | 第45页 |
| 1.3 实验试剂 | 第45页 |
| 2 方法 | 第45-46页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第45-46页 |
| 2.2 在体电生理记录 | 第46页 |
| 2.3 EA预处理模型 | 第46页 |
| 2.4 统计分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-47页 |
| 实验四 CB_1R拮抗剂AM281阻断EA预处理诱导dHPC CA3-CA1在体LTD介导的脑缺血耐受 | 第47-50页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| 1.1 实验动物 | 第47页 |
| 1.2 实验仪器 | 第47页 |
| 1.3 实验试剂 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-49页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第48页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第48页 |
| 2.3 小鼠全脑缺血模型 | 第48页 |
| 2.4 NeuN染色及阳性细胞计数 | 第48页 |
| 2.5 FJB染色及阳性细胞计数 | 第48-49页 |
| 2.6 统计分析 | 第49页 |
| 3 结果 | 第49-50页 |
| 实验五 GABA能神经元CB_1R介导EA预处理诱导的dHPC CA3-CA1在体LTD | 第50-53页 |
| 1 材料 | 第50页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 实验仪器 | 第50页 |
| 1.3 实验试剂 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-51页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第50-51页 |
| 2.2 在体电生理技术 | 第51页 |
| 2.3 EA预处理模型 | 第51页 |
| 2.4 统计分析 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-53页 |
| 实验六 EA预处理通过GABA能神经元CB_1R诱导dHPC CA3-CA1在体LTD介导的脑缺血耐受 | 第53-55页 |
| 1 材料 | 第53页 |
| 1.1 实验动物 | 第53页 |
| 1.2 实验仪器 | 第53页 |
| 1.3 实验试剂 | 第53页 |
| 2 方法 | 第53-55页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第53-54页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第54页 |
| 2.3 小鼠全脑缺血模型 | 第54页 |
| 2.4 NeuN染色及阳性细胞计数 | 第54页 |
| 2.5 FJB染色及阳性细胞计数 | 第54页 |
| 2.6 统计分析 | 第54-55页 |
| 3 结果 | 第55页 |
| 讨论 | 第55-58页 |
| 第三部分 CB_1R介导EA引起的递质含量改变 | 第58-66页 |
| 实验七 EA预处理诱导dHPC CA1区GABA含量增多 | 第58-62页 |
| 1 材料 | 第58-59页 |
| 1.1 实验动物 | 第58页 |
| 1.2 实验仪器 | 第58-59页 |
| 1.3 实验试剂 | 第59页 |
| 2 方法 | 第59-61页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第59-60页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第60页 |
| 2.3 在体微透析技术 | 第60-61页 |
| 2.4 统计分析 | 第61页 |
| 3 结果 | 第61-62页 |
| 实验八 基因敲除GABA能神经元CB_1R阻断EA预处理诱导dHPC CA1区GABA含量增多 | 第62-64页 |
| 1 材料 | 第62页 |
| 1.1 实验动物 | 第62页 |
| 1.2 实验仪器 | 第62页 |
| 1.3 实验试剂 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-63页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第62-63页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第63页 |
| 2.3 在体微透析技术 | 第63页 |
| 2.4 统计分析 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-64页 |
| 讨论 | 第64-66页 |
| 第四部分 对照实验：EA对工作记忆的影响、以及敲除GABA能神经元CB_1R对自发运动和焦虑样行为的影响 | 第66-76页 |
| 实验九 EA预处理诱导的在体LTD不损害空间工作记忆 | 第66-70页 |
| 1 材料 | 第66-67页 |
| 1.1 实验动物 | 第66页 |
| 1.2 实验仪器 | 第66-67页 |
| 1.3 实验试剂 | 第67页 |
| 2 方法 | 第67-69页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第67-68页 |
| 2.2 EA预处理模型 | 第68页 |
| 2.3 T-型迷宫行为学检测 | 第68-69页 |
| 2.5 统计分析 | 第69页 |
| 3 结果 | 第69-70页 |
| 实验十 全身性基因敲除GABA能神经元CB_1R不影响小鼠的自发运动和焦虑样行为 | 第70-75页 |
| 1 材料 | 第70页 |
| 1.1 实验动物 | 第70页 |
| 1.2 实验仪器 | 第70页 |
| 1.3 实验试剂 | 第70页 |
| 2 方法 | 第70-73页 |
| 2.1 实验动物分组和计划 | 第70-71页 |
| 2.2 旷场行为学检测 | 第71-72页 |
| 2.3 高架十字迷宫行为学检测 | 第72-73页 |
| 2.4 统计分析 | 第73页 |
| 3 结果 | 第73-75页 |
| 讨论 | 第75-76页 |
| 小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-91页 |
| 个人简历和研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
