| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-26页 |
| 1.1 荧光分子探针概述 | 第10-18页 |
| 1.1.1 荧光分子成像 | 第10-11页 |
| 1.1.2 分子荧光探针的设计 | 第11-14页 |
| 1.1.3 荧光信号响应机制 | 第14-18页 |
| 1.2 近红外激发双光子探针在生物成像中的应用 | 第18-24页 |
| 1.2.1 简介 | 第18-19页 |
| 1.2.2 双光子吸收 | 第19页 |
| 1.2.3 双光子探针在生物成像中的应用 | 第19-22页 |
| 1.2.4 近红外激发TP探针在环境中的应用 | 第22-23页 |
| 1.2.5 TP探针在医学领域中的应用 | 第23-24页 |
| 1.3 活性小分子 | 第24页 |
| 1.4 本文研究思路 | 第24-26页 |
| 第二章 快速响应、高选择性检测硫化氢的比率型双光子荧光探针的构建及其在生物成像中的应用 | 第26-44页 |
| 2.1 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 Probe1的合成 | 第28-29页 |
| 2.1.4 Probe1对于H_2S的荧光响应测试 | 第29页 |
| 2.1.5 Probe1对于Hela细胞的细胞毒性测试 | 第29页 |
| 2.1.6 H_2S检测的细胞成像 | 第29-30页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第30-43页 |
| 2.2.1设计与合成Probe1 | 第30-31页 |
| 2.2.2 Probe1与H_2S在水溶液中荧光响应情况 | 第31-33页 |
| 2.2.3 Probe1对H_2S的选择性检测 | 第33-35页 |
| 2.2.4 Probe1对于H_2S的动力学响应 | 第35-36页 |
| 2.2.5 pH的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.6 探针的TP性能 | 第37页 |
| 2.2.7 响应机制 | 第37-39页 |
| 2.2.8 H_2S的TP细胞成像 | 第39-43页 |
| 2.3 小结 | 第43-44页 |
| 第三章 用于超氧基自由基检测的基于FRET机制的比率型双光子荧光探针的设计合成及其在活体细胞中的成像应用 | 第44-60页 |
| 3.1 实验部分 | 第46-49页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第46页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第46页 |
| 3.1.3 合成步骤 | 第46-48页 |
| 3.1.4 溶液中的光谱测定 | 第48-49页 |
| 3.1.5 TPR-O的细胞毒性实验 | 第49页 |
| 3.1.6 TP显微成像 | 第49页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第49-59页 |
| 3.2.1 TPR-O的设计与合成 | 第49-51页 |
| 3.2.2 TPR-O的光谱性能和分析性能 | 第51-53页 |
| 3.2.3 TPR-O对O_2~(·-)的动力学响应 | 第53-54页 |
| 3.2.4 TPR-O针对O_2~(·-)的选择性测试 | 第54-55页 |
| 3.2.5 pH的影响 | 第55-56页 |
| 3.2.6 TP性能研究 | 第56页 |
| 3.2.7 响应机制 | 第56-57页 |
| 3.2.8 O_2~(·-)在细胞中的荧光成像 | 第57-59页 |
| 3.3 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 结论与展望 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
