| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 一 通络糖泰方对高糖培养SD大鼠施旺细胞髓鞘调控因子P0蛋白的影响 | 第13-41页 |
| 1 实验材料 | 第13-15页 |
| 1.1 实验动物研究 | 第13页 |
| 1.2 实验用药 | 第13页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第13-15页 |
| 2 实验方法 | 第15-26页 |
| 2.1 SCs原代培养、纯化、传代及鉴定 | 第15-18页 |
| 2.2 通络糖泰含药血清制备 | 第18页 |
| 2.3 实验分组 | 第18-19页 |
| 2.4 Westernblot法测定6组3个复孔培养SCs24h、48h、72h的P0蛋白的表达 | 第19-25页 |
| 2.5 统计学方法 | 第25-26页 |
| 3 结果 | 第26-29页 |
| 3.1 S-100免疫荧光鉴定 | 第26页 |
| 3.2 Westernblot检测髓鞘调控因子P0的表达 | 第26-29页 |
| 4 讨论 | 第29-41页 |
| 4.1 SCs原代培养、纯化及鉴定方案选择的依据 | 第29-30页 |
| 4.2 选用高糖培养SCs的依据 | 第30-31页 |
| 4.3 中医学对DPN的认识 | 第31-34页 |
| 4.4 通络糖泰方立方依据 | 第34-38页 |
| 4.5 中药血清药理学 | 第38-39页 |
| 4.6 通络糖泰对SD大鼠SCs髓鞘调控因子P0表达的影响 | 第39-41页 |
| 二 高糖缺氧条件下SD大鼠DRGn培养方法研究 | 第41-60页 |
| 1 实验材料 | 第41-43页 |
| 1.1 实验动物研究 | 第41页 |
| 1.2 主要实验试剂与仪器 | 第41-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-46页 |
| 2.1 DRGn的原代培养、纯化及鉴定 | 第43-45页 |
| 2.2 高糖和(或)缺氧终浓度确定 | 第45-46页 |
| 2.3 ROS检测方法 | 第46页 |
| 2.4 CCK-8法检测方法 | 第46页 |
| 2.5 统计分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-55页 |
| 3.1 DRGn形态学观察 | 第46-47页 |
| 3.2 DRGn免疫荧光鉴定 | 第47-48页 |
| 3.3 高糖缺氧损伤后的细胞形态学观察 | 第48-50页 |
| 3.4 检测细胞内活性氧(ROS)水平摸索高糖缺氧损伤对DRGn的最适条件 | 第50-52页 |
| 3.5 CCK-8法摸索高糖缺氧损伤对DRGn活性的最适条件 | 第52-55页 |
| 5 讨论 | 第55-60页 |
| 5.1 背根神经节神经元(DRGn)的原代培养、纯化及鉴定 | 第55-57页 |
| 5.2 建立高糖缺氧模型的依据及结果 | 第57-59页 |
| 5.3 ROS法检测依据 | 第59页 |
| 5.4 CCK-8法检测依据 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 问题与展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 综述 | 第68-74页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 附件1 | 第75-76页 |
