| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一章 新生SD大鼠腹腔注射LPS后对海马内IL-1β及其受体表达的影响 | 第13-27页 |
| 1 实验目的 | 第13页 |
| 2 实验动物及材料 | 第13-17页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 实验材料 | 第13-15页 |
| 2.3 试剂准备 | 第15-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-21页 |
| 3.1 实验动物模型制备 | 第17页 |
| 3.2 海马组织提取 | 第17-18页 |
| 3.3 Western Blot法检测LPS注射后海马IL-1β及其受体IL-1R1表达情况 | 第18-21页 |
| 3.4 统计方法 | 第21页 |
| 4 实验结果 | 第21-24页 |
| 4.1 LPS腹腔注射后对新生SD大鼠的影响 | 第21-23页 |
| 4.2 LPS刺激后新生SD大鼠海马IL-1β蛋白表达水平升高 | 第23-24页 |
| 4.3 LPS刺激后新生SD大鼠海马IL-1R1蛋白表达水平升高 | 第24页 |
| 5 实验讨论 | 第24-26页 |
| 6 实验结论 | 第26-27页 |
| 第二章 新生SD大鼠腹腔注射LPS后对海马神经干细胞分化的影响 | 第27-42页 |
| 1 实验目的 | 第27页 |
| 2 实验动物及材料 | 第27-28页 |
| 2.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.2 实验材料 | 第27-28页 |
| 2.3 试剂准备 | 第28页 |
| 3 实验方法 | 第28-34页 |
| 3.1 实验动物模型制备 | 第28-29页 |
| 3.2 海马组织提取 | 第29页 |
| 3.3 心脏灌注及脑组织切片 | 第29页 |
| 3.4 Western Blot法检测LPS注射后海马中神经干细胞标志物SOX2,分化细胞标志物DCX、 NeuN、 GFAP、NG2的蛋白表达情况 | 第29-33页 |
| 3.5 免疫荧光发检测新生大鼠腹腔注射LPS后GFAP的表达 | 第33-34页 |
| 3.6 统计方法 | 第34页 |
| 4 实验结果 | 第34-40页 |
| 4.1 新生SD大鼠腹腔注射LPS后对海马神经干细胞的影响 | 第34-35页 |
| 4.2 新生SD大鼠腹腔注射LPS后对海马神经干细胞分化的影响 | 第35-40页 |
| 5 实验讨论 | 第40-41页 |
| 6 实验结论 | 第41-42页 |
| 第三章 IL-1β干预NPCs后IL-1R1的表达和对NPCs增殖及其分化的影响 | 第42-59页 |
| 1 实验目的 | 第42页 |
| 2 实验动物及材料 | 第42-44页 |
| 2.1 实验动物 | 第42页 |
| 2.2 实验材料 | 第42-44页 |
| 2.3 试剂准备 | 第44页 |
| 3 实验方法 | 第44-52页 |
| 3.1 实验细胞分组 | 第44页 |
| 3.2 原代NPCs培养 | 第44-45页 |
| 3.3 CCK8检测不同浓度IL-1β对NPCs的影响 | 第45页 |
| 3.4 免疫荧光检测NPCs增殖情况及细胞鉴定 | 第45-46页 |
| 3.5 RT-PCR法检测IL-1β激活NPCs上的IL-1R1 | 第46-48页 |
| 3.6 免疫荧光检测IL-1β激活NPCs上的IL-1R1 | 第48-49页 |
| 3.7 NPCs的分化培养 | 第49-50页 |
| 3.8 免疫荧光发检测IL-1β干预NPCs分化后DCX、MAP2、GFAP的表达 | 第50页 |
| 3.9 Western Blot法检测IL-1β干预NPCs分化后细胞标志物DCX、NeuN、 GFAP的蛋白表达情况 | 第50-51页 |
| 3.10 统计方法 | 第51-52页 |
| 4 实验结果 | 第52-57页 |
| 4.1 NPCs的鉴定 | 第52-53页 |
| 4.2 不同浓度IL-1β对NPCs的影响 | 第53页 |
| 4.3 IL-1β上调NPCs上的受体IL-1R1的表达 | 第53-54页 |
| 4.4 IL-1β抑制NPCs的增殖 | 第54-55页 |
| 4.5 IL-1β对NPCs分化成神经元、星形胶质细胞的影响 | 第55-57页 |
| 5 实验讨论 | 第57-58页 |
| 6 实验结论 | 第58-59页 |
| 第四章 IL-1β对Notch信号通路的影响及二者对NPCs分化的调控 | 第59-70页 |
| 1 实验目的 | 第59页 |
| 2 实验动物及材料 | 第59-60页 |
| 2.1 实验动物 | 第59页 |
| 2.2 实验材料 | 第59-60页 |
| 2.3 实验准备 | 第60页 |
| 3 实验方法 | 第60-63页 |
| 3.1 实验细胞分组 | 第60-61页 |
| 3.2 Western Blot检测IL-1β在NPCs分化过程中对Notch信号通路的影响 | 第61页 |
| 3.3 RT-PCR法检测IL-1β干预NPCs分化12h后对Notch信号通路的影响 | 第61-62页 |
| 3.4 免疫荧光检测IL-1β干预NPCs分化1天后NICD和Hes1的表达情况 | 第62页 |
| 3.5 Western Blot检测阻断Notch信号通路后IL-1β干预NPCs分化4天后细胞标志物DCX、NeuN、GFAP和NG2的蛋白表达情况 | 第62-63页 |
| 3.6 统计方法 | 第63页 |
| 4 实验结果 | 第63-68页 |
| 4.1 IL-1β在NPCs分化过程中对Notch信号通路的影响 | 第63-67页 |
| 4.2 IL-1β激活Notch信号通路影响NPCs的分化方向 | 第67-68页 |
| 5 实验讨论 | 第68-69页 |
| 6 实验结论 | 第69-70页 |
| 全文总结 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-75页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
