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全细胞促葡萄糖区域选择性酯合成反应的研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
目录第10-15页
第一章 绪论第15-29页
    1.1 非水介质中的生物催化第15-20页
        1.1.1 非水介质中生物催化的特点第15页
        1.1.2 生物催化的非水介质第15-18页
            1.1.2.1 水-有机溶剂体系中的生物催化第15-16页
            1.1.2.2 有机溶剂体系中的生物催化第16页
            1.1.2.3 混合有机溶剂体系的生物催化第16-17页
            1.1.2.4 无溶剂系统中的生物催化第17页
            1.1.2.5 离子液体中的生物催化第17页
            1.1.2.6 超临界流体和气体中的生物催化第17-18页
        1.1.3 影响非水介质中生物催化的主要因素第18-20页
            1.1.3.1 反应介质对生物催化的影响第18-19页
            1.1.3.2 水分对生物催化的影响第19页
            1.1.3.3 非水相中传质阻力对生物催化的影响第19-20页
            1.1.3.4 生物催化剂的培养过程之影响第20页
    1.2 全细胞催化反应第20-22页
        1.2.1 全细胞催化第20-21页
        1.2.2 全细胞催化剂的来源及产脂肪酶微生物的来源第21-22页
        1.2.3 全细胞催化剂在酯合成反应中的应用第22页
    1.3 糖酯合成的研究现状第22-26页
        1.3.1 糖酯的化学合成法第23页
        1.3.2 糖酯的酶法合成第23-24页
            1.3.2.1 有机溶剂中的酶法合成第23-24页
            1.3.2.2 离子液体中的酶法合成第24页
            1.3.2.3 无溶剂体系中的酶促合成第24页
        1.3.3 酶促反应生产效率 (Productivity) 的提高方法第24-26页
            1.3.3.1 平衡产率(Equilibrium yield)的提高第24-25页
            1.3.3.2 反应速度的提高第25-26页
    1.4 本研究的意义和主要内容第26-29页
        1.4.1 本论文研究的意义第26-27页
        1.4.2 本论文研究的内容第27-29页
第二章 可催化葡萄糖酯合成反应的菌种筛选及其区域选择性研究第29-46页
    2.1 试验材料第30-31页
        2.1.1 菌种第30页
        2.1.2 主要试剂第30-31页
    2.2 主要仪器设备第31页
    2.3 试验方法第31-33页
        2.3.1 菌种培养方法第31-32页
        2.3.2 全细胞催化剂制备方法第32页
        2.3.4 不同种类微生物促葡萄糖酯的合成反应第32页
        2.3.5 反应初速度和转化率的计算第32页
            2.3.5.1 初速度 V0(Initial velocity)值(mmol/L·h)第32页
            2.3.5.2 转化率 Conversion (%)第32页
        2.3.6 高效液相色谱(HPLC)分析第32-33页
        2.3.7 产物的分离纯化第33页
        2.3.8 产物的结构鉴定第33页
    2.4 结果与讨论第33-45页
        2.4.1 不同种类微生物全细胞促葡萄糖酯合成反应的研究第33-35页
        2.4.2 不同培养条件下获取的微生物全细胞催化反应活性的对比研究第35-38页
        2.4.3 全细胞催化葡萄糖酯合成反应的液相色谱分析第38-40页
        2.4.4 全细胞促葡糖酯合成反应产物的薄层色谱(TLC)分离及分析第40-41页
        2.4.5 全细胞促葡萄糖酯合成反应产物的结构鉴定第41-45页
            2.4.5.1 反应产物结构的质谱分析第41-43页
            2.4.5.2 反应产物结构的核磁共振碳谱分析第43-45页
    2.5 本章小结第45-46页
第三章 有机溶剂中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的研究第46-62页
    3.1 试验材料第47页
        3.1.1 菌种第47页
        3.1.2 主要试剂第47页
    3.2 主要仪器设备第47-48页
    3.3 试验方法第48-50页
        3.3.1 菌种培养方法第48页
        3.3.2 全细胞催化剂制备方法第48页
        3.3.3 反应初速度和转化率的计算第48页
        3.3.4 高效液相色谱(HPLC)分析第48页
        3.3.5 混合有机溶剂疏水性的计算第48页
        3.3.6 有机溶剂种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第48页
        3.3.7 含吡啶混合有机溶剂种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第48-49页
        3.3.8 混合有机溶剂中疏水性溶剂浓度对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第49页
        3.3.9 全细胞催化剂用量对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第49页
        3.3.10 混合有机溶剂中初始水含量对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第49页
        3.3.11 底物摩尔比对混合有机溶剂中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第49-50页
        3.3.12 反应温度对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第50页
        3.3.13 施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的放大第50页
    3.4 结果与讨论第50-60页
        3.4.1 有机溶剂种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第50-51页
        3.4.2 混合有机溶剂种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第51-52页
        3.4.3 混合溶剂中疏水性溶剂含量对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第52-53页
        3.4.4 全细胞催化剂用量对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第53-55页
        3.4.5 混合有机溶剂中初始水含量对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第55-56页
        3.4.6 底物摩尔比对混合有机溶剂中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第56-58页
        3.4.7 反应温度对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应的影响第58-60页
        3.4.8 施氏假单胞菌细胞促葡萄糖丙酯合成反应体系的放大研究第60页
    3.5 本章小结第60-62页
第四章 离子液体中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的研究第62-78页
    4.1 试验材料第63页
        4.1.1 菌种第63页
        4.1.2 主要试剂第63页
    4.2 主要仪器设备第63-64页
    4.3 试验方法第64-68页
        4.3.1 菌种培养方法第64页
        4.3.2 全细胞催化剂制备方法第64页
        4.3.3 产物生成率的计算第64页
        4.3.4 3,5-二硝基水杨酸(DNS)法测葡萄糖的浓度第64-65页
        4.3.5 高效液相色谱(HPLC)分析第65页
        4.3.6 不同纯离子液体中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的研究第65页
        4.3.7 不同混合离子液体中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的研究第65-66页
        4.3.8 含吡啶混合离子液体中离子液体种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第66页
        4.3.9 离子液体-有机溶剂混合体系中离子液体的浓度对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第66页
        4.3.10 施氏假单胞菌全细胞催化剂在不同离子液体混合体系中操作稳定性的研究第66-67页
        4.3.11 双溶剂体系 C4MIm TfO-吡啶中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖与不同酰基供体转酯反应的时间曲线研究第67页
        4.3.12 产物的分离纯化第67页
        4.3.13 产物的结构鉴定第67-68页
    4.4 结果与讨论第68-76页
        4.4.1 离子液体种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第68-70页
        4.4.2 混合离子液体种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第70-71页
        4.4.3 含吡啶混合离子液体中离子液体种类对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第71页
        4.4.4 离子液体浓度对施氏假单胞菌细胞促葡萄糖酯合成反应的影响第71-72页
        4.4.5 施氏假单胞菌全细胞催化剂在不同离子液体混合体系中的操作稳定性第72-74页
        4.4.6 双溶剂体系 C4MIm TfO-吡啶中施氏假单胞菌细胞促葡萄糖与不同酰基供体转酯反应的时间曲线第74-76页
    4.5 本章小结第76-78页
结论与展望第78-82页
    主要研究结论第78-81页
    论文创新点第81页
    研究展望第81-82页
参考文献第82-93页
附录1 HPLC 色谱图第93-98页
附录2 超高分辨飞行时间质谱图第98-100页
附录3 ~(13)C 核磁共振图谱第100-103页
附录4 DNS 法测葡萄糖浓度的标准曲线第103-104页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第104-105页
致谢第105-106页
附件第106页

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