| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 缩写词简表 | 第13-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-17页 |
| 第二章 材料与方法 | 第17-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 主要器械与仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第19页 |
| 2.2 研究方法 | 第19-27页 |
| 2.2.1 实验动物模型制作及分组 | 第19-20页 |
| 2.2.2 行为学观察 | 第20页 |
| 2.2.3 Co-IP鉴定Ub与Nedd4-2的相关性 | 第20-22页 |
| 2.2.4 HE染色观察大鼠海马区细胞形态 | 第22-23页 |
| 2.2.5 尼氏染色观察大鼠海马区神经元丢失 | 第23-24页 |
| 2.2.6 Timm染色观察大鼠海马区神经元苔藓纤维出芽 | 第24-25页 |
| 2.2.7 免疫荧光双标结合激光共聚焦技术分析Ub与Nedd4-2在大鼠海马中的分布关系 | 第25-26页 |
| 2.2.8 Western bolt检测Ub、Nedd4-2、CIC-2水平 | 第26-27页 |
| 2.3 统计学处理 | 第27-28页 |
| 第三章 结果 | 第28-53页 |
| 3.1 SD大鼠mTLE模型的建立 | 第28-29页 |
| 3.1.1 模型制备 | 第28页 |
| 3.1.2 行为学观察 | 第28-29页 |
| 3.2 Co-IP鉴定Ub与Nedd4-2的相关性 | 第29-30页 |
| 3.3 大鼠海马组织病理学观察 | 第30-45页 |
| 3.3.1 大鼠海马DG区、CA1区、CA3区HE染色结果 | 第30-35页 |
| 3.3.2 大鼠海马DG区、CA1区、CA3区尼氏染色结果 | 第35-41页 |
| 3.3.3 大鼠海马DG区、CA3区Timm染色结果 | 第41-45页 |
| 3.4 免疫荧光双标结合激光共聚焦技术观察大鼠海马中Ub与Nedd4-2的分布情况 | 第45-50页 |
| 3.5 Western bolt检测Ub、Nedd4-2、CIC-2水平 | 第50-53页 |
| 3.5.1 Ub的表达 | 第50页 |
| 3.5.2 Nedd4-2的表达 | 第50页 |
| 3.5.3 CIC-2表达 | 第50-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 mTLE大鼠模型的建立以及病理组织学改变 | 第53-54页 |
| 4.2 Ub、Nedd4-2、CIC-2在mTLE中的相互关系及表达 | 第54-56页 |
| 4.3 泛素蛋白酶体抑制剂对mTLE的影响 | 第56-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 综述 | 第63-73页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
