| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一部分 心脏脱细胞基质的制备与鉴定 | 第17-26页 |
| 1 材料 | 第17-19页 |
| 1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第18页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第18-19页 |
| 2 方法 | 第19-20页 |
| 2.1 猪心肌脱细胞基质的制备 | 第19页 |
| 2.2 心脏脱细胞基质结构、组成检测 | 第19-20页 |
| 2.3 统计学分析 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-24页 |
| 3.1 猪心肌脱细胞洗脱效果 | 第20-22页 |
| 3.2 脱细胞基质细胞内物质存留评价 | 第22-23页 |
| 3.3 心脏脱细胞基质的细胞外基质成分组织学检测 | 第23-24页 |
| 4 讨论 | 第24-26页 |
| 第二部分 心脏脱细胞基质海绵的制备与生物相容性评价 | 第26-35页 |
| 1 材料 | 第26-28页 |
| 1.1 实验动物 | 第26-27页 |
| 1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第27页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第27-28页 |
| 2 方法 | 第28-30页 |
| 2.1 心脏脱细胞基质海绵制备 | 第28页 |
| 2.2 孔隙度检测 | 第28页 |
| 2.3 原代小鼠胚胎成纤维细胞的分离培养 | 第28-29页 |
| 2.4 小鼠胚胎成纤维细胞在心脏脱细胞基质海绵中的三维培养 | 第29页 |
| 2.5 Live/Dead检测细胞活性 | 第29页 |
| 2.6 内毒素检测 | 第29-30页 |
| 3 结果 | 第30-33页 |
| 3.1 心脏脱细胞基质海绵的理化性能检测 | 第30-31页 |
| 3.2 心脏脱细胞基质海绵组织学观察 | 第31-32页 |
| 3.3 小鼠胚胎成纤维细胞培养 | 第32页 |
| 3.4 小鼠胚胎成纤维细胞在心脏脱细胞基质海绵中的活性检测 | 第32-33页 |
| 3.5 内毒素检测 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 第三部分 基于心脏脱细胞基质海绵的体外三维肿瘤模型构建研究 | 第35-51页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 细胞系 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第36-37页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-45页 |
| 2.1 单层细胞(2D)培养 | 第37页 |
| 2.2 基于心脏脱细胞基质海绵的三维肿瘤模型建立 | 第37-38页 |
| 2.3 基于Matrigel的三维肿瘤模型建立 | 第38页 |
| 2.4 H&E染色 | 第38-39页 |
| 2.5 Live/Dead染色 | 第39页 |
| 2.6 Real-time PCR检测MMP家族及血管化相关基因表达 | 第39-41页 |
| 2.7 Western Blotting检测MMP家族及血管化相关基因的蛋白表达情况 | 第41-44页 |
| 2.8 统计学分析 | 第44-45页 |
| 3 结果 | 第45-48页 |
| 3.1 基于心脏脱细胞基质海绵的三维肿瘤模型的相差显微镜观察 | 第45页 |
| 3.2 基于心脏脱细胞基质海绵的三维肿瘤模型的组织学检测 | 第45-46页 |
| 3.3 基于心脏脱细胞基质海绵的三维肿瘤模型中细胞活性检测 | 第46-47页 |
| 3.4 体外三维肿瘤模型中A549细胞生物学行为变化情况 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 文献综述 | 第52-72页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 作者简历及攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第72-76页 |
| 学位论文数据集 | 第76页 |
