| 论文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 1 实验材料 | 第9-11页 |
| 1.1 实验动物和药品 | 第9页 |
| 1.2 主要材料与试剂 | 第9-10页 |
| 1.2.1 主要材料 | 第9页 |
| 1.2.2 主要试剂及配置方法 | 第9-10页 |
| 1.3 主要仪器 | 第10-11页 |
| 2 实验方法 | 第11-18页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第11页 |
| 2.2 佐剂性关节炎模型制备 | 第11页 |
| 2.3 给药方法 | 第11页 |
| 2.4 足趾肿胀度检测 | 第11-12页 |
| 2.5 热痛阈测定 | 第12页 |
| 2.6 50%机械痛阈测定 | 第12页 |
| 2.7 实验动物处死与材料获取 | 第12-13页 |
| 2.7.1 大鼠灌注固定 | 第12-13页 |
| 2.7.2 踝关节摘取 | 第13页 |
| 2.7.3 脊髓与 DRG 摘取 | 第13页 |
| 2.7.4 用于 RT-PCR 的大鼠脊髓摘取 | 第13页 |
| 2.8 软骨组织固定、包埋和 HE 染色 | 第13-14页 |
| 2.8.1 关节脱钙 | 第13页 |
| 2.8.2 踝关节组织包埋 | 第13页 |
| 2.8.3 HE 染色 | 第13-14页 |
| 2.9 脊髓与 DRG 免疫组织化学染色 | 第14-15页 |
| 2.9.1 iNOS、SP、IL-1β、TNF-α、NMDAR1 普通免疫组织化学染色 | 第14-15页 |
| 2.9.2 BSI-B4 免疫荧光组织化学染色 | 第15页 |
| 2.10 RT-PCR 检测 L_5脊髓iNOS、SP、IL-1β、TNF-α的mRNA 水平 | 第15-17页 |
| 2.10.1 总 RNA 提取 | 第15-16页 |
| 2.10.2 逆转录 | 第16页 |
| 2.10.3 PCR | 第16-17页 |
| 2.11 统计学分析 | 第17-18页 |
| 3 实验结果 | 第18-35页 |
| 3.1 TP 对 AA 大鼠足跖肿胀度的影响 | 第18-20页 |
| 3.2 TP 对 AA 大鼠踝关节滑模组织病理学影响 | 第20页 |
| 3.3 TP 对 AA 大鼠 MWT%、热痛阈的影响 | 第20-22页 |
| 3.4 免疫组化法检测 TP 对 AA 大鼠脊髓和背根神经节中 iNOS、SP、IL-1β、TNF-α、NMDAR1、BSI-B4 结合位点表达的影响 | 第22-33页 |
| 3.4.1 TP 对 AA 大鼠脊髓和背根神经节中 iNOS 的影响 | 第22-24页 |
| 3.4.2 不同剂量 TP 对各组大鼠 L_5脊髓背角和 DRG 中SP 含量变化影响 | 第24-26页 |
| 3.4.3 不同剂量 TP 对各组大鼠 L_5脊髓背角和 DRG 中NMDAR1 表达变化影响 | 第26-28页 |
| 3.4.4 不同剂量 TP 对各组大鼠 L_5脊髓背角和 DRG 中TNF-α含量变化影响 | 第28-29页 |
| 3.4.5 不同剂量 TP 对各组大鼠 L_5脊髓背角和 DRG 中IL-1β含量变化影响 | 第29-31页 |
| 3.4.6 不同剂量 TP 对各组大鼠 L_5脊髓背角和 DRG 中BSI-B4 结合位点变化影响 | 第31-33页 |
| 3.5 RT-PCR 法检测 TP 对 AA 大鼠脊髓中 iNOS、SP、TNF-α、IL-1β的 mRNA 表达的影响 | 第33-35页 |
| 4 讨论 | 第35-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 附录A 缩略词 | 第41-42页 |
| 附录B 综述 | 第42-50页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 在学研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
