| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 水榆花楸概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 水榆花楸特征概述 | 第11页 |
| 1.1.2 花楸化学成分研究进展 | 第11-13页 |
| 1.2 黄酮类化合物概述 | 第13-18页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物概况 | 第13-14页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物的提取方法 | 第14-16页 |
| 1.2.3 黄酮类化合物含量的测定 | 第16-17页 |
| 1.2.4 黄酮类化合物活性与功能 | 第17-18页 |
| 1.2.5 黄酮类化合物的应用 | 第18页 |
| 1.3 多糖类化合物概述 | 第18-22页 |
| 1.3.1 多糖类化合物概况 | 第18-19页 |
| 1.3.2 多糖类化合物提取分离 | 第19-20页 |
| 1.3.3 多糖分离纯化 | 第20-21页 |
| 1.3.4 多糖药理作用 | 第21-22页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第22页 |
| 1.5 研究内容和方法 | 第22-23页 |
| 1.5.1 水榆花楸总黄酮及多糖的提取工艺 | 第22页 |
| 1.5.2 水榆花楸总黄酮化合物及多糖的纯化 | 第22页 |
| 1.5.3 水榆花楸总黄酮化合物及多糖的抗氧化活性测定 | 第22-23页 |
| 第二章 水榆花楸叶总黄酮分离纯化及抗氧化研究 | 第23-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.2 试验主要仪器 | 第23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-25页 |
| 2.3.1 花楸叶黄酮提取液的制备 | 第23页 |
| 2.3.2 双水相体系的配制 | 第23页 |
| 2.3.3 黄酮含量、萃取率、分配系数的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.4 双水体系的确定 | 第24页 |
| 2.3.5 最佳萃取条件的确定 | 第24页 |
| 2.3.6 总黄酮体外抗氧化活性测定 | 第24-25页 |
| 2.4 试验结果与分析 | 第25-30页 |
| 2.4.1 双水相体系的确定 | 第25-27页 |
| 2.4.2 双水相萃取的影响因素 | 第27-30页 |
| 2.4.3 正交试验 | 第30页 |
| 2.4.4 最佳萃取条件的验证 | 第30页 |
| 2.5 总黄酮抗氧化活性测定 | 第30-32页 |
| 2.5.1 总抗氧化活性测定 | 第30-31页 |
| 2.5.2 DPPH自由基清除活性 | 第31页 |
| 2.5.3 羟自由基清除活性 | 第31-32页 |
| 第三章 水榆花楸叶多糖提取纯化及抗氧化活性研究 | 第32-42页 |
| 3.1 试验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.2 试验主要仪器 | 第32页 |
| 3.3 试验方法 | 第32-35页 |
| 3.3.1 花楸叶多糖溶液的制备 | 第32页 |
| 3.3.2 多糖含量测定 | 第32-33页 |
| 3.3.3 水榆花楸超声提取多糖最优化工艺 | 第33-34页 |
| 3.3.4 无机盐对水榆花楸多糖醇沉特性的影响 | 第34页 |
| 3.3.5 水榆花楸多糖纯化及结构检测 | 第34页 |
| 3.3.6 水榆花楸多糖抗氧化活性研究 | 第34-35页 |
| 3.4 试验结果与分析 | 第35-42页 |
| 3.4.1 多糖标准曲线 | 第35页 |
| 3.4.2 超声波提取多糖最佳工艺 | 第35-37页 |
| 3.4.3 无机盐对花楸多糖醇沉影响 | 第37-39页 |
| 3.4.4 花楸多糖结构测定 | 第39-40页 |
| 3.4.5 多糖抗氧化活性测定 | 第40-42页 |
| 第四章 结论与讨论 | 第42-43页 |
| 4.1 试验结论 | 第42页 |
| 4.2 试验讨论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |