| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 光致电化学的相关特性 | 第11-13页 |
| 1.1.1 定义和发展 | 第11-13页 |
| 1.1.2 光致电化学光电流产生的机理 | 第13页 |
| 1.2 光电材料 | 第13-15页 |
| 1.2.1 纳米半导体光敏材料 | 第14页 |
| 1.2.2 钌(Ⅱ)-联吡啶配合物光敏材料 | 第14页 |
| 1.2.3 有机光敏材料 | 第14页 |
| 1.2.4 复合光电材料 | 第14-15页 |
| 1.2.5 生物大分子 | 第15页 |
| 1.3 量子点材料 | 第15-18页 |
| 1.3.1 量子点定义和发展 | 第15-16页 |
| 1.3.2 量子点的性质 | 第16-17页 |
| 1.3.3 量子点的制备 | 第17页 |
| 1.3.4 量子点在PEC传感分析中的应用前景 | 第17-18页 |
| 1.4 传感器的概述 | 第18-21页 |
| 1.4.1 传感器的定义 | 第18页 |
| 1.4.2 传感器的发展及应用 | 第18页 |
| 1.4.3 生物传感器的分类 | 第18-20页 |
| 1.4.4 生物传感器的特点 | 第20页 |
| 1.4.5 生物传感器的展望 | 第20-21页 |
| 1.5 生物化学分析方法 | 第21-23页 |
| 1.5.1 荧光分析方法 | 第21页 |
| 1.5.2 化学发光分析方法 | 第21-22页 |
| 1.5.3 电化学分析方法 | 第22页 |
| 1.5.4 电化学发光分析方法 | 第22页 |
| 1.5.5 光致电分析方法 | 第22-23页 |
| 1.6 DNA的放大技术 | 第23-24页 |
| 1.7 课题的意义 | 第24-25页 |
| 第二章 基于量子点探针和酶辅助循环放大策略光电检测目标DNA的研究 | 第25-37页 |
| 2.1 前言 | 第25-26页 |
| 2.2 试验试剂和仪器 | 第26-28页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.3 试验操作步骤 | 第28-29页 |
| 2.3.1 DNA的处理 | 第28页 |
| 2.3.2 制备TGA-CdSQDs | 第28页 |
| 2.3.3 制备Au纳米粒子 | 第28-29页 |
| 2.3.4 制备AuNP-DNA | 第29页 |
| 2.3.5 制备CdSQDs-HP | 第29页 |
| 2.3.6 目标DNA的循环放大 | 第29页 |
| 2.3.7 组装传感器进行光电检测 | 第29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-35页 |
| 2.4.1 材料表征 | 第29-31页 |
| 2.4.2 传感器的可行性探究以及阻抗表征 | 第31-32页 |
| 2.4.3 基于量子点探针和酶辅助循环放大策略光电检测DNA的原理 | 第32-33页 |
| 2.4.4 光电机理 | 第33页 |
| 2.4.5 实验条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.4.6 PEC DNA生物传感分析方法检测目标DNA | 第34页 |
| 2.4.7 光电传感分析方法的选择性探究 | 第34-35页 |
| 2.5 实际样品检测 | 第35-36页 |
| 2.6 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 基于Ag~+与CdTe量子点离子交换技术以及多重循环放大反应光电检测腺苷的研究 | 第37-52页 |
| 3.1 前言 | 第37-38页 |
| 3.2 实验试剂和实验装置 | 第38-40页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 实验装置 | 第39-40页 |
| 3.3 实验步骤 | 第40-41页 |
| 3.3.1 制备MPA - CdTeQDs | 第40页 |
| 3.3.2 核酸的预处理 | 第40页 |
| 3.3.3 腺苷的循环放大过程 | 第40-41页 |
| 3.3.4 构建传感器 | 第41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 3.4.1 基于三重循环放大反应以及Ag~+与CdTeQDs离子交换技术光电检测腺苷的原理 | 第41-43页 |
| 3.4.2 离子交换的表征 | 第43-45页 |
| 3.4.3 利用凝胶电泳表征DNA的循环放大反应 | 第45页 |
| 3.4.4 基于CdTe量子点离子交换反应的PEC检测平台的表征 | 第45-47页 |
| 3.4.5 基于三重循环放大反应以及Ag~+与CdTeQDs离子交换技术光电检测腺苷的机理 | 第47页 |
| 3.4.6 实验条件的优化 | 第47-48页 |
| 3.4.7 基于Ag~+与CdTeQDs离子交换反应和三重循环放大反应检测腺苷 | 第48-49页 |
| 3.4.8 基于Ag~+与CdTeQDs离子交换和三重循环放大反应检测腺苷的选择性 | 第49-50页 |
| 3.4.9 实际样品检测 | 第50-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 基于DNA酶的循环放大反应以及链式杂交掺杂锰卟啉淬灭Cd Se量子点检测凝血酶的研究 | 第52-65页 |
| 4.1 前言 | 第52-53页 |
| 4.2 实验试剂和仪器 | 第53-55页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第54-55页 |
| 4.3 实验步骤 | 第55-56页 |
| 4.3.1 制备水相MPA - CdSeQDs | 第55页 |
| 4.3.2 制备TiO_2 | 第55页 |
| 4.3.3 DNA和凝血酶的预处理 | 第55页 |
| 4.3.4 目标的循环放大 | 第55-56页 |
| 4.3.5 CdSeQDs-C-DNA探针的组装 | 第56页 |
| 4.3.6 基于DNA酶的循环放大反应以及链式杂交掺杂锰卟啉淬灭Cd Se量子点检测凝血酶 | 第56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 4.4.1 基于DNA酶的循环放大反应以及链式杂交掺杂锰卟啉淬灭Cd Se量子点检测凝血酶的原理 | 第56-58页 |
| 4.4.2 反应机理 | 第58页 |
| 4.4.3 CdSeQDs和TiO_2材料的表征 | 第58-59页 |
| 4.4.4 基于DNA酶的循环放大反应以及链式杂交掺杂锰卟啉淬灭Cd Se量子点检测凝血酶的可行性探究以及阻抗表征 | 第59-60页 |
| 4.4.5 利用凝胶电泳实现对传感循环放大过程的表征 | 第60-61页 |
| 4.4.6 实验条件的优化 | 第61-62页 |
| 4.4.7 基于DNA酶的循环放大反应以及链式杂交掺杂锰卟啉淬灭Cd Se量子点检测凝血酶 | 第62-63页 |
| 4.4.8 基于锰卟啉淬灭CdSeQDs检测凝血酶的选择性 | 第63页 |
| 4.4.9 实际样品检测 | 第63-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第78-79页 |
