| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 前言 | 第12-26页 |
| 1.1 鱼类黏膜免疫研究进展 | 第12-19页 |
| 1.1.1 鱼类黏膜免疫系统的组成 | 第12-14页 |
| 1.1.2 鱼类黏膜免疫系统的特异性免疫应答 | 第14-17页 |
| 1.1.3 鱼类新型黏膜免疫球蛋白的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.2 多聚免疫球蛋白受体研究进展 | 第19-25页 |
| 1.2.1 多聚免疫球蛋白受体的结构 | 第19-21页 |
| 1.2.2 多聚免疫球蛋白受体的功能 | 第21-22页 |
| 1.2.3 硬骨鱼类多聚免疫球蛋白受体的研究进展 | 第22-25页 |
| 1.3 本研究目的及意义 | 第25-26页 |
| 2 注射和浸泡免疫后牙鲆组织中pIgR与IgM基因表达变化 | 第26-36页 |
| 2.1 实验材料与试剂仪器 | 第26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 灭活鳗弧菌疫苗的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 牙鲆免疫及样品采集 | 第27页 |
| 2.2.3 牙鲆mRNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.4 cDNA链的合成 | 第28页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR引物设计 | 第28-29页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR检测 | 第29页 |
| 2.3 结果 | 第29-34页 |
| 2.3.1 注射和浸泡免疫后牙鲆组织中pIgR基因水平的变化 | 第29-32页 |
| 2.3.2 注射和浸泡免疫后牙鲆组织中IgM基因水平的变化 | 第32-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-36页 |
| 3 牙鲆黏液及胆汁中pIgR和IgM蛋白水平变化 | 第36-42页 |
| 3.1 实验材料与试剂仪器 | 第36页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第36页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第36页 |
| 3.2 实验方法 | 第36-38页 |
| 3.2.1 牙鲆黏液及胆汁的收集 | 第36-37页 |
| 3.2.2 ELISA法检测牙鲆黏液及胆汁中pIgR的蛋白水平变化 | 第37页 |
| 3.2.3 ELISA法检测牙鲆黏液及胆汁中IgM的蛋白水平变化 | 第37-38页 |
| 3.3 结果 | 第38-40页 |
| 3.3.1 牙鲆黏液及胆汁中pIgR蛋白水平变化 | 第38-39页 |
| 3.3.2 牙鲆黏液及胆汁中IgM蛋白水平变化 | 第39-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 4 牙鲆pIgR-IgM复合物检测 | 第42-49页 |
| 4.1 实验材料与试剂仪器 | 第42页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第42页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第42页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 样品采集及前处理 | 第42-43页 |
| 4.2.2 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE) | 第43页 |
| 4.2.3 免疫印迹(Western blotting) | 第43-44页 |
| 4.3 结果 | 第44-47页 |
| 4.3.1 牙鲆血清、黏液及胆汁Native-PAGE分析 | 第44-45页 |
| 4.3.2 牙鲆pIgR-IgM复合物检测结果 | 第45-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 牙鲆黏膜组织中pIgR与IgM定位 | 第49-55页 |
| 5.1 实验材料与试剂仪器 | 第49页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第49页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第49页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第49页 |
| 5.2 实验方法 | 第49-52页 |
| 5.2.1 牙鲆组织石蜡切片的制备 | 第49-51页 |
| 5.2.2 免疫组织化学染色 | 第51-52页 |
| 5.3 结果 | 第52-53页 |
| 5.4 讨论 | 第53-55页 |
| 总结 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
| 学术论文 | 第71页 |
