| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-23页 |
| 第一章 植物SNARE蛋白功能的研究进展 | 第11-23页 |
| 摘要 | 第11页 |
| 1 SNARE蛋白的结构与分类 | 第11-12页 |
| 2 植物SNARE蛋白家族的简介 | 第12-13页 |
| 2.1 Q-SNARE蛋白家族 | 第12-13页 |
| 2.2 R-SNARE蛋白家族 | 第13页 |
| 3 植物SNARE蛋白介导的膜融合机制 | 第13-15页 |
| 3.1 植物SNARE核心复合体的结构 | 第13-14页 |
| 3.2 植物SNARE蛋白介导的膜融合过程 | 第14-15页 |
| 4 植物SNAREs互作的调节因子 | 第15-17页 |
| 4.1 SM蛋白 | 第15-16页 |
| 4.2 NSF和α-SNAP蛋白 | 第16-17页 |
| 4.3 光照调节 | 第17页 |
| 5 植物SNARE蛋白的生物学功能 | 第17-21页 |
| 5.1 与植物的抗病性有关 | 第17-18页 |
| 5.2 参与植物对非生物胁迫的响应 | 第18-19页 |
| 5.3 与脂质筏的重要联系 | 第19页 |
| 5.4 参与细胞板的形成 | 第19页 |
| 5.5 参与ABA信号传导 | 第19-20页 |
| 5.6 与植物向重力性相关 | 第20页 |
| 5.7 参与植物生长发育的调节 | 第20-21页 |
| 6 植物SNARE蛋白研究展望 | 第21-23页 |
| 第二部分 研究报告 | 第23-59页 |
| 第二章 转OSNPSN11基因水稻苗期稻瘟病发病进程的显微观察及统计分析 | 第23-33页 |
| 摘要 | 第23-24页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| 1.1 植物材料与育苗 | 第24页 |
| 1.2 病原菌的培养和接种 | 第24-25页 |
| 1.3 Uvitex荧光染色 | 第25页 |
| 1.4 3,3-二氨基联苯胺(DAB)显色 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-31页 |
| 2.1 稻瘟病菌丝的观察及发病程度的统计分析 | 第25-28页 |
| 2.2 用DAB显色的方法对水稻的抗病反应进行细胞学分析 | 第28-31页 |
| 3 讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 转OSNPSN11基因水稻苗期稻瘟病抗性与过氧化氢含量及几种抗氧化酶活性变化的关系分析 | 第33-45页 |
| 摘要 | 第33-34页 |
| 1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 1.1 植物材料与育苗 | 第34页 |
| 1.2 病原菌的培养、接种和取样 | 第34页 |
| 1.3 过氧化氢(H_2O_2)含量的测定 | 第34-35页 |
| 1.4 CAT、POD、SOD酶液的制备及活性测定 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-42页 |
| 2.1 转OsNPSN11基因水稻稻瘟病抗性与过氧化氢含量的关系分析 | 第36-37页 |
| 2.2 转OsNPSN11基因水稻稻瘟病抗性与CAT活性变化的关系分析 | 第37-39页 |
| 2.3 转OsNPSN11基因水稻稻瘟病抗性与POD活性变化的关系分析 | 第39-40页 |
| 2.4 转OsNPSN11基因水稻稻瘟病抗性与SOD活性变化的关系分析 | 第40-42页 |
| 3 讨论 | 第42-45页 |
| 第四章 过量表达OSNPSN11的转基因水稻的转录组分析 | 第45-59页 |
| 摘要 | 第45页 |
| 1 材料与方法 | 第45-51页 |
| 1.1 植物材料与育苗 | 第45页 |
| 1.2 稻瘟病菌的培养、接种和取样 | 第45-46页 |
| 1.3 水稻基因芯片 | 第46-49页 |
| 1.4 基因表达的PCR分析 | 第49-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-56页 |
| 2.1 基因芯片的数据统计和半定量RT-PCR验证 | 第51-52页 |
| 2.2 差异表达基因的功能分类 | 第52-53页 |
| 2.3 差异表达基因的表达分析 | 第53-56页 |
| 3 讨论 | 第56-59页 |
| 主要参考文献 | 第59-67页 |
| 附录 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
