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水稻细菌性条斑病菌中预测的双组份调控子基因的突变研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 前言第13-30页
    1.1 黄单胞菌及其致病机理研究进展第13-18页
        1.1.1 黄单胞菌及其引起的植物病害第13页
        1.1.2 黄单胞菌基因组的研究进展第13-15页
        1.1.3 主要致病生化因子第15-18页
    1.2 双组份系统第18-26页
        1.2.1 双组份系统的组成第18页
        1.2.2 组氨酸激酶第18-20页
        1.2.3 反应调控子结构域第20-21页
        1.2.4 传递类型第21-23页
        1.2.5 双组份调控系统的功能第23-24页
        1.2.6 PhoB/PhoR系统第24-26页
    1.3 水稻细菌性条斑病及其致病菌第26-28页
        1.3.1 水稻细菌性条斑病菌的命名第26页
        1.3.2 水稻细菌性条斑病菌的分布第26页
        1.3.3 水稻细菌性条斑病菌引起病害的方式第26-27页
        1.3.4 水稻细菌性条斑病菌与水稻白叶枯病菌第27-28页
        1.3.5 Xoc GXO1的研究进展第28页
    1.4 本研究的主要内容、目的和意义第28-30页
        1.4.1 主要内容与目的第28-29页
        1.4.2 主要意义第29-30页
第二章 材料与方法第30-45页
    2.1 实验材料第30-35页
        2.1.1 菌株与质粒第30-31页
        2.1.2 引物第31-32页
        2.1.3 抗生素第32-33页
        2.1.4 培养基第33页
        2.1.5 溶液与缓冲液第33-35页
    2.2 常规微生物学操作第35-37页
        2.2.1 菌株培养与菌种的保存第35页
        2.2.2 胞外多糖的检测第35-36页
        2.2.3 胞外蛋白酶的检测第36页
        2.2.4 游动性的检测第36页
        2.2.5 抗逆性的检测第36页
        2.2.6 丰富培养基中Xoc生长曲线的检测第36-37页
    2.3 核酸制备与质粒提取第37-39页
        2.3.1 Xoc GX01的DNA制备第37页
        2.3.2 Xoc GX01的RNA提取第37-38页
        2.3.3 RNA的消化与验证第38页
        2.3.4 cDNA的合成第38-39页
        2.3.5 质粒的提取第39页
    2.4 DNA的分子操作第39-41页
        2.4.1 DNA的纯化第39-40页
        2.4.2 DNA的酶切第40页
        2.4.3 DNA的连接第40页
        2.4.4 DNA的电泳第40页
        2.4.5 DNA的测序第40-41页
    2.5 聚合酶链式反应第41页
        2.5.1 引物设计及配制第41页
        2.5.2 PCR扩增的模板的制备第41页
        2.5.3 PCR反应体系与条件第41页
    2.6 细菌的转化与接合实验第41-43页
        2.6.1 感受态细胞的制备第41-43页
        2.6.2 三亲本接合实验第43页
    2.7 非极性整合突变体的构建与互补第43-44页
        2.7.1 非极性整合突变体的构建第43-44页
        2.7.2 互补株的构建第44页
    2.8 植株试验第44-45页
        2.8.1 植株材料与工具第44页
        2.8.2 致病力检测第44页
        2.8.3 过敏反应第44-45页
第三章 结果与分析第45-77页
    3.1 候选基因的选择与生物信息学分析第45-48页
        3.1.1 Xoc GXO1中推测的双组份系统调控子基因第45-46页
        3.1.2 候选调控子基因在其他黄单胞菌中的分布第46-47页
        3.1.3 调控子蛋白质结构域的生物信息学分析第47-48页
    3.2 候选调控子基因的整合突变及表型分析第48-52页
        3.2.1 突变体的胞外多糖(EPS)检测第48-49页
        3.2.2 突变体的胞外蛋白酶检测第49-50页
        3.2.3 突变体的游动性检测第50-51页
        3.2.4 突变体的致病性检测第51-52页
    3.3 候选互补基因的选择及其特征第52-57页
        3.3.1 候选的互补基因及特征第52页
        3.3.2 XOC1021在基因组中的位置及上下游关系第52-53页
        3.3.3 XOC1021的生物信息学分析第53-57页
    3.4 XOC1021非极性整合突变体的构建第57-60页
        3.4.1 PCR扩增XOC1021的内部片段第57-58页
        3.4.2 重组质粒nK1021的构建第58-60页
        3.4.3 突变体NK1021的验证第60页
    3.5 NK1021的遗传互补第60-64页
        3.5.1 互补外源的扩增第61-62页
        3.5.2 重组质粒pLAFER3C1021的构建第62-63页
        3.5.3 互补菌株的PCR验证第63-64页
        3.5.4 PNK1021的构建与验证第64页
    3.6 突变体与互补菌株的生理生化特性分析第64-75页
        3.6.1 CNK1021与NK1021的生长情况检测第64-66页
        3.6.2 CNK1021与NK1021胞外多糖的检测第66-67页
        3.6.3 CNK1021与NK1021胞外蛋白酶的检测第67-68页
        3.6.4 CNK1021与NK1021游动性的检测第68-69页
        3.6.5 CNK1021与NK1021的抗逆性检测第69-73页
        3.6.6 CNK1021与NK1021的HR反应第73-74页
        3.6.7 CNK1021与NK1021的致病力检测第74-75页
    3.7 XOC1020与XOC1021的转录关系分析第75-77页
第四章 总结与讨论第77-80页
    4.1 功能基因组学的研究方法第77页
    4.2 双组分系统中18个调控子在Xoc GXO1中推测的功能第77-78页
    4.3 Xoc GX01中phoB基因的功能第78-79页
    4.4 pLAFR3对突变体的影响第79-80页
参考文献第80-93页
致谢第93-94页
攻读学位期间发表论文情况第94页

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