摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第1章 引言 | 第10-21页 |
1.1 岩藻聚糖的组成与结构 | 第10-12页 |
1.1.1 岩藻聚糖的组成 | 第10-11页 |
1.1.2 岩藻聚糖的结构 | 第11-12页 |
1.2 岩藻聚糖的生物活性 | 第12-14页 |
1.2.1 岩藻聚糖生物活性研究进展 | 第12-13页 |
1.2.2 分子结构和分子量对岩藻聚糖生物活性的影响 | 第13-14页 |
1.3 多糖降解方法的研究进展 | 第14-17页 |
1.3.1 物理法 | 第14-15页 |
1.3.2 化学法 | 第15-16页 |
1.3.3 生物法 | 第16-17页 |
1.4 超滤膜分离技术在食品工业中的应用 | 第17-18页 |
1.4.1 超滤在乳制品生产中的应用 | 第17页 |
1.4.2 超滤在酶提取中的应用 | 第17-18页 |
1.4.3 超滤在果汁和食品酿造中的应用 | 第18页 |
1.5 海藻抑菌活性物质的研究进展 | 第18-19页 |
1.6 立题依据及意义 | 第19-20页 |
1.7 研究内容与技术路线 | 第20-21页 |
第2章 超滤制备海带岩藻聚糖 | 第21-34页 |
2.1 实验材料 | 第21-22页 |
2.1.1 实验材料 | 第21页 |
2.1.2 实验试剂 | 第21页 |
2.1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
2.2 实验方法 | 第22-27页 |
2.2.1 实验流程 | 第22-24页 |
2.2.2 温度对多糖降解的影响 | 第24页 |
2.2.3 pH对多糖降解的影响 | 第24页 |
2.2.4 pH对提取液中褐藻酸脱除效果的影响 | 第24页 |
2.2.5 超滤过程压力对膜通量的影响 | 第24页 |
2.2.6 多糖浓度对超滤提取多糖的影响 | 第24页 |
2.2.7 理化指标的测定 | 第24-27页 |
2.3 结果与分析 | 第27-33页 |
2.3.1 多糖降解的影响因素 | 第27-29页 |
2.3.2 pH对提取液中褐藻酸脱除效果的影响 | 第29页 |
2.3.3 超滤过程压力对膜通量的影响 | 第29-31页 |
2.3.4 多糖浓度对超滤提取多糖的影响 | 第31-32页 |
2.3.5 超滤工艺流程与产品理化指标 | 第32-33页 |
2.4 本章小结 | 第33-34页 |
第3章 岩藻聚糖降解工艺的研究 | 第34-43页 |
3.1 实验材料 | 第34-35页 |
3.1.1 实验原料 | 第34页 |
3.1.2 实验试剂 | 第34页 |
3.1.3 实验仪器 | 第34-35页 |
3.2 实验方法 | 第35-37页 |
3.2.0 理化指标的测定 | 第35-36页 |
3.2.1 脱重金属岩藻聚糖的制备 | 第36-37页 |
3.2.2 酸水解降解岩藻聚糖 | 第37页 |
3.2.3 超声波辅助过氧化氢水解岩藻聚糖 | 第37页 |
3.2.4 低分子量岩藻聚糖的制备 | 第37页 |
3.3 结果与讨论 | 第37-41页 |
3.3.1 岩藻聚糖脱重金属的研究 | 第37-38页 |
3.3.2 酸水解岩藻聚糖还原糖含量的变化 | 第38页 |
3.3.3 超声波辅助过氧化氢降解对岩藻聚糖的影响 | 第38-40页 |
3.3.4 低分子量岩藻聚糖的制备工艺对SO_4~(2-)含量的影响的研究 | 第40-41页 |
3.4 本章小结 | 第41-43页 |
第4章 低分子量岩藻聚糖抗菌活性的研究 | 第43-53页 |
4.1 实验材料 | 第43-44页 |
4.1.1 实验原料 | 第43页 |
4.1.2 实验试剂 | 第43-44页 |
4.1.3 实验仪器 | 第44页 |
4.2 实验方法 | 第44-46页 |
4.2.1 岩藻聚糖及其降解多糖的抗氧化的研究 | 第44-45页 |
4.2.2 岩藻聚糖抑菌体外活性的研究 | 第45-46页 |
4.3 结果与分析 | 第46-52页 |
4.3.1 岩藻聚糖抗氧化的研究 | 第46-47页 |
4.3.2 岩藻聚糖体外抑菌活性的研究 | 第47-52页 |
4.4 本章小结 | 第52-53页 |
第5章 结论与展望 | 第53-55页 |
5.1 结论 | 第53页 |
5.2 研究的创新点 | 第53-54页 |
5.3 展望 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-61页 |
在学期间发表的学术论文 | 第61页 |