| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 缩略词 | 第12-13页 |
| 第一部分 水稻类病斑基因Fd-GOGAT的功能分析 | 第13-57页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 1.1 植物类病斑突变体的研究进展 | 第13-18页 |
| 1.1.1 植物类病斑的概念 | 第13-14页 |
| 1.1.2 水稻类病斑突变体的类型及发生机理 | 第14-17页 |
| 1.1.2.1 水稻类病斑突变体类型 | 第14页 |
| 1.1.2.2 水稻类病斑突变体发生机理 | 第14-17页 |
| 1.1.3 水稻中类病斑突变体基因的克隆 | 第17-18页 |
| 1.2 GOGAT蛋白的研究概况 | 第18-23页 |
| 1.2.1 Fd-GOGAT蛋白相关突变体研究 | 第18-19页 |
| 1.2.2 高等植物Fd-GOGAT蛋白在光呼吸中的作用 | 第19-23页 |
| 1.2.2.1 光呼吸的概念 | 第19-20页 |
| 1.2.2.2 光呼吸代谢途径 | 第20-21页 |
| 1.2.2.3 光呼吸的生理功能 | 第21-23页 |
| 1.2.2.4 Fd-GOGAT蛋白在光呼吸中的作用 | 第23页 |
| 1.3 本研究的目的意义 | 第23-25页 |
| 第二章 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2.1 实验材料与种植条件 | 第25页 |
| 2.2 叶绿素含量测定 | 第25页 |
| 2.3 叶绿体透射电镜分析 | 第25页 |
| 2.4 水稻叶片总RNA提取 | 第25页 |
| 2.5 Real-time PCR | 第25-26页 |
| 2.6 氨基酸序列比对和进化关系分析 | 第26页 |
| 2.7 农杆菌转化 | 第26-27页 |
| 2.8 转基因阳性植株的鉴定 | 第27页 |
| 2.9 Fd-GOGAT的时空表达分析 | 第27页 |
| 2.10 遮光实验 | 第27页 |
| 2.11 光呼吸测定 | 第27-28页 |
| 2.12 细胞学分析 | 第28-29页 |
| 2.13 抗氧化指标测定 | 第29页 |
| 2.14 GOGAT的酶活性测定 | 第29-30页 |
| 2.15 叶片中游离氨基酸的测定 | 第30-31页 |
| 第三章 结果与分析 | 第31-43页 |
| 3.1 spl32突变体的表型表征 | 第31-32页 |
| 3.2 突变体spl32的叶绿体超微结构发生了改变 | 第32-33页 |
| 3.3 Fd-GOGAT功能互补验证 | 第33-34页 |
| 3.4 Fd-GOGAT的进化树分析 | 第34-35页 |
| 3.5 Fd-GOGAT的表达分析 | 第35页 |
| 3.6 类病斑的形成受光诱导 | 第35-36页 |
| 3.7 突变体spl32的光呼吸受到抑制 | 第36-37页 |
| 3.8 甘氨酸(Gly)和谷胱甘肽(GSH)的含量降低 | 第37页 |
| 3.9 spl32突变体叶片中活性氧(ROS)大量积累 | 第37-38页 |
| 3.10 spl32突变体中ROS清除酶的活性发生改变 | 第38-39页 |
| 3.11 spl32突变体中抗病相关基因的表达上调 | 第39页 |
| 3.12 spl32突变体的GOGAT酶活性降低 | 第39-40页 |
| 3.13 NADH-GOGAT2在光呼吸受抑制的条件下发挥重要作用 | 第40-41页 |
| 3.14 spl32突变体中氨基酸代谢失衡 | 第41-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-47页 |
| 4.1 spl32突变体的表型表征 | 第43页 |
| 4.2 Fd-GOGAT基因的突变导致spl32突变体类病斑的发生 | 第43-44页 |
| 4.3 spl32突变体中积累了过量的ROS | 第44-45页 |
| 4.4 spl32突变体中抗病基因的应答反应 | 第45页 |
| 4.5 spl32突变体中氨基酸代谢紊乱 | 第45页 |
| 4.6 本研究的创新与不足之处 | 第45-47页 |
| 第一部分 参考文献 | 第47-57页 |
| 第二部分 水稻白条纹突变体K170的基因定位 | 第57-97页 |
| 第一章 文献综述 | 第57-75页 |
| 1.1 水稻叶色突变体的分类 | 第57-58页 |
| 1.2 叶色突变体的来源 | 第58-63页 |
| 1.2.1 自然变异 | 第58页 |
| 1.2.2 人工诱变 | 第58-63页 |
| 1.2.2.1 物理诱变 | 第58-59页 |
| 1.2.2.2 化学诱变 | 第59-60页 |
| 1.2.2.3 插入突变 | 第60-63页 |
| 1.3 叶色突变体克隆进展 | 第63-71页 |
| 1.4 叶色突变体的主要发生机制 | 第71-74页 |
| 1.4.1 叶绿素的生物合成与分解代谢途径受阻 | 第71-73页 |
| 1.4.2 叶绿素发育途径受阻 | 第73-74页 |
| 1.5 叶色突变体的应用前景 | 第74页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第74-75页 |
| 第二章 材料与方法 | 第75-79页 |
| 2.1 实验材料与种植条件 | 第75页 |
| 2.2 叶绿素含量测定 | 第75页 |
| 2.3 叶绿体透射电镜 | 第75页 |
| 2.4 遗传分析和定位群体的构建 | 第75页 |
| 2.5 DNA样品的制备 | 第75-76页 |
| 2.6 PCR反应 | 第76-77页 |
| 2.7 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第77页 |
| 2.8 基因定位 | 第77-78页 |
| 2.8.1 初步定位 | 第77页 |
| 2.8.2 精细定位 | 第77-78页 |
| 2.9 RNA的提取及反转录 | 第78页 |
| 2.10 Real-time PCR | 第78-79页 |
| 第三章 结果与分析 | 第79-85页 |
| 3.1 K170的表型观察 | 第79页 |
| 3.2 K170的色素含量 | 第79-80页 |
| 3.3 叶绿体的超微结构分析 | 第80-81页 |
| 3.4 遗传分析 | 第81页 |
| 3.5 基因定位 | 第81-82页 |
| 3.6 预测定位区间内包含的基因 | 第82-83页 |
| 3.7 光合系统相关基因的表达 | 第83页 |
| 3.8 K170突变体中叶绿素合成及发育相关基因的表达分析 | 第83-85页 |
| 第四章 讨论 | 第85-87页 |
| 4.1 K170白条纹突变体的表型及叶绿素含量变化 | 第85页 |
| 4.2 K170的遗传分析、定位及候选基因分析 | 第85页 |
| 4.3 突变体K170的叶绿素合成及发育途径受到影响 | 第85页 |
| 4.4 本研究的创新与不足 | 第85-87页 |
| 第二部分 参考文献 | 第87-97页 |
| 附录 | 第97-99页 |
| 致谢 | 第99页 |
