| 内容提要 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 第1章 文献综述 | 第21-39页 |
| 1.1 间充质干细胞的生物学特点及在放射损伤和肿瘤方面的应用 | 第21-31页 |
| 1.1.1 骨髓间质干细胞的研究起源 | 第21-22页 |
| 1.1.2 骨髓间充质干细胞的分离培养 | 第22-24页 |
| 1.1.3 MSCs生物学特点 | 第24-27页 |
| 1.1.4 MSCs在放射损伤中的应用 | 第27-30页 |
| 1.1.5 MSCs与肿瘤的关系 | 第30-31页 |
| 1.1.6 问题与展望 | 第31页 |
| 1.2 β-catenin、c-myc和cyclin D1与肿瘤的关系 | 第31-39页 |
| 1.2.1 Wnt信号通路的简介 | 第31-33页 |
| 1.2.2 β-catenin | 第33-34页 |
| 1.2.3 c-myc | 第34-36页 |
| 1.2.4 cyclin D1 | 第36-38页 |
| 1.2.5 问题与展望 | 第38-39页 |
| 第2章 材料与方法 | 第39-51页 |
| 2.1 主要试剂与器材 | 第39-40页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.2 主要器材 | 第40页 |
| 2.2 主要仪器 | 第40-41页 |
| 2.3 实验动物 | 第41页 |
| 2.4 照射与分组 | 第41页 |
| 2.4.1 照射条件 | 第41页 |
| 2.5 骨髓间充质干细胞的体外分离、培养及鉴定 | 第41-44页 |
| 2.5.1 主要液体配制 | 第42页 |
| 2.5.2 骨髓MSCs的分离培养 | 第42-43页 |
| 2.5.3 MTT检测MSCs生长特点 | 第43页 |
| 2.5.4 流式细胞术分析MSCs的细胞周期 | 第43页 |
| 2.5.5 流式细胞术鉴定MSCs表型 | 第43页 |
| 2.5.6 体外诱导MSCs分化为成骨细胞 | 第43-44页 |
| 2.5.7 MSCs体外诱导分化为脂肪样细胞 | 第44页 |
| 2.6 DAPI标记的MSCs在小鼠胸腺迁徙及定位观察 | 第44-45页 |
| 2.7 小鼠胸腺组织病理学观察 | 第45页 |
| 2.8 胸腺细胞周期及凋亡的检测 | 第45页 |
| 2.9 小鼠胸腺组织中p53、survivin、VEGF、β-catenin、c-myc和cyclin D1 mRNA表达 | 第45-48页 |
| 2.9.1 小鼠胸腺组织中总RNA的提取 | 第46页 |
| 2.9.2 RNA质量的鉴定 | 第46页 |
| 2.9.3 cDNA的合成 | 第46页 |
| 2.9.4 引物的设计及合成 | 第46-48页 |
| 2.9.5 PCR反应 | 第48页 |
| 2.9.6 PCR产物的确定分析 | 第48页 |
| 2.10 小鼠胸腺组织中β-catenin、c-myc和cyclin D1蛋白表达 | 第48-49页 |
| 2.10.1 免疫组化检测小鼠胸腺组织中β-catenin、c-myc和cyclin D1蛋白表达 | 第48-49页 |
| 2.10.2 小鼠胸腺组织中β-catenin、c-myc和cyclin D1蛋白表达结果判定 | 第49页 |
| 2.11 统计学方法 | 第49-51页 |
| 第3章 实验结果 | 第51-75页 |
| 3.1 小鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 | 第51-53页 |
| 3.1.1 MSC的形态学观察 | 第51页 |
| 3.1.2 MSCs生长曲线的测定 | 第51-52页 |
| 3.1.3 MSCs的细胞周期测定分析 | 第52页 |
| 3.1.4 MSCs表型鉴定 | 第52-53页 |
| 3.1.5 MSCs诱导分化为成骨细胞 | 第53页 |
| 3.1.6 MSCs体外诱导分化为脂肪样细胞 | 第53页 |
| 3.2 MSCs在小鼠胸腺组织移植及定位 | 第53-54页 |
| 3.2.1 DAPI标记MSCs | 第53页 |
| 3.2.2 DAPI标记的MSCs细胞在胸腺组织移植及定位 | 第53-54页 |
| 3.3 MSCs移植对辐射小鼠的影响 | 第54-58页 |
| 3.3.1 动物一般情况 | 第54页 |
| 3.3.2 动物体重变化 | 第54-55页 |
| 3.3.3 胸腺细胞周期和凋亡率的检测 | 第55-57页 |
| 3.3.4 胸腺组织病理学检测 | 第57-58页 |
| 3.3.5 小鼠胸腺淋巴瘤成瘤率 | 第58页 |
| 3.4 小鼠胸腺组织中p53、survivin和VEGF mRNA表达 | 第58-63页 |
| 3.4.1 MSCs输入30、60和90 d后胸腺组织p53基因表达的变化 | 第58-60页 |
| 3.4.2 MSCs输入30、60和90 d后胸腺组织survivin基因表达的变化 | 第60-61页 |
| 3.4.3 MSCs输入30、60和90 d后胸腺组织VEGF基因表达的变化 | 第61-63页 |
| 3.5 小鼠胸腺组织中β-catenin、c-myc和cyclin D1 mRNA表达 | 第63-71页 |
| 3.5.1 β-catenin基因表达的变化 | 第63-65页 |
| 3.5.2 c-myc基因表达的变化 | 第65-68页 |
| 3.5.3 cyclin D1基因表达的变化 | 第68-71页 |
| 3.6 小鼠胸腺组织中β-catenin、c-myc和cyclin D1蛋白表达 | 第71-75页 |
| 3.6.1 β-catenin蛋白在胸腺组织的定位与表达 | 第71-72页 |
| 3.6.2 c-myc在胸腺组织的定位与表达 | 第72页 |
| 3.6.3 cyclin D1在胸腺组织的定位与表达 | 第72-73页 |
| 3.6.4 β-catenin与c-myc和cyclin D1在胸腺组织中表达的相关关系 | 第73-75页 |
| 第4章 讨论 | 第75-89页 |
| 4.1 骨髓间充质干细胞体外培养和鉴定的方法 | 第75-77页 |
| 4.2 电离辐射对胸腺组织的损伤 | 第77-78页 |
| 4.3 MSCs移植对胸腺辐射凋亡的作用 | 第78-84页 |
| 4.4 MSCs在辐射诱发胸腺瘤过程中作用机制的探讨 | 第84-89页 |
| 结论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-107页 |
| 附图 | 第107-111页 |
| 个人简历及攻读博士期间发表的学术论文 | 第111-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
