| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 1 植物抗旱研究进展 | 第11-17页 |
| 1.1 干旱胁迫对植物形态、生理生化的影响 | 第11-15页 |
| 1.1.1 干旱胁迫对植物形态结构的影响 | 第11-12页 |
| 1.1.2 干旱胁迫下植物气孔调控及光合作用的响应 | 第12-13页 |
| 1.1.3 干旱胁迫下对植物的渗透调节机制 | 第13-14页 |
| 1.1.4 干旱胁迫下植物的抗氧化防御机制 | 第14-15页 |
| 1.2 植物抗旱分子机制 | 第15-17页 |
| 1.2.1 植物激素 | 第15页 |
| 1.2.2 干旱胁迫诱导蛋白 | 第15-16页 |
| 1.2.3 抗旱相关基因 | 第16-17页 |
| 2 木薯简介 | 第17-18页 |
| 2.1 木薯概况 | 第17-18页 |
| 2.2 木薯抗旱研究进展 | 第18页 |
| 3 谷氧还蛋白(GRXs)研究进展 | 第18-21页 |
| 3.1 GRXs性质及分类 | 第19页 |
| 3.2 植物GRXs相关研究 | 第19-21页 |
| 4 本课题的研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二章 不同木薯品种对干旱胁迫的生理响应及抗旱性分析 | 第22-40页 |
| 1 材料与方法 | 第22-28页 |
| 1.1 种质材料与处理 | 第22-24页 |
| 1.2 实验主要仪器与设备 | 第24页 |
| 1.3 92个木薯栽培品种气孔密度的测定 | 第24-25页 |
| 1.4 6个木薯栽培品种叶片光合参数的测定 | 第25页 |
| 1.5 6个木薯栽培品种叶片蛋白质含量的测定 | 第25页 |
| 1.6 6个木薯栽培品种叶片超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第25-26页 |
| 1.7 6个木薯栽培品种叶片脯氨酸(Pro)含量的测定 | 第26页 |
| 1.8 6个木薯栽培品种叶片丙二醛(MDA)含量的测定 | 第26页 |
| 1.9 6个木薯栽培品种叶片过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第26-27页 |
| 1.10 6个木薯栽培品种叶片过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第27页 |
| 1.11 6个木薯栽培品种叶片可溶性糖含量的测定 | 第27页 |
| 1.12 6个木薯栽培品种叶片脱落酸(ABA)含量的测定 | 第27-28页 |
| 1.13 生理生化指标的数据分析方法 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-38页 |
| 2.1 干旱胁迫对92个木薯栽培品种叶片气孔密度的影响 | 第28-30页 |
| 2.2 干旱胁迫对转基因木薯MeMYB2-RNAi的影响 | 第30-32页 |
| 2.3 干旱胁迫对6个木薯栽培品种光合参数的影响 | 第32-34页 |
| 2.4 干旱胁迫对6个木薯栽培品种可溶性蛋白含量的影响 | 第34页 |
| 2.5 干旱胁迫对6个木薯栽培品种超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响 | 第34-35页 |
| 2.6 干旱胁迫对6个木薯栽培品种脯氨酸(Pro)含量的影响 | 第35页 |
| 2.7 干旱胁迫对6个木薯栽培品种丙二醛(MDA)含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.8 干旱胁迫对6个木薯栽培品种过氧化物酶(POD)活性的影响 | 第36-37页 |
| 2.9 干旱胁迫对6个木薯品种过氧化氢酶(CAT)活性的影响 | 第37页 |
| 2.10 干旱胁迫对6个木薯栽培品种可溶性糖含量的影响 | 第37-38页 |
| 2.11 干旱胁迫对6个木薯栽培品种脱落酸(ABA)含量的影响 | 第38页 |
| 3 讨论 | 第38-39页 |
| 4 结论 | 第39-40页 |
| 第三章 木薯干旱胁迫响应CC类谷氧还蛋白基因的筛选与体外表达分析 | 第40-59页 |
| 1 材料与方法 | 第40-48页 |
| 1.1 材料与处理 | 第40-41页 |
| 1.2 菌种、质粒及主要试剂 | 第41页 |
| 1.3 实验主要仪器与设备 | 第41-42页 |
| 1.4 引物合成及序列测序 | 第42页 |
| 1.5 木薯总RNA提取及cDNA合成 | 第42-43页 |
| 1.6 半定量RT-PCR分析 | 第43页 |
| 1.7 木薯MeGRX058和MeGRX785基因序列特点及蛋白结构预测 | 第43-44页 |
| 1.8 木薯MeGRX058基因和MeGRX785基因编码序列的克隆 | 第44-45页 |
| 1.9 木薯MeGRX058和MeGRX785互作蛋白的初步筛选 | 第45页 |
| 1.10 原核表达载体的构建、转化 | 第45-46页 |
| 1.11 融合蛋白在大肠杆菌中的表达及Western blot鉴定 | 第46-47页 |
| 1.12 酵母表达载体的构建、转化 | 第47页 |
| 1.13 融合蛋白在酵母中的表达及Western blot鉴定 | 第47页 |
| 1.14 融合蛋白在木薯内的表达及Western blot鉴定 | 第47-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-57页 |
| 2.1 木薯CC类GRX基因在木薯中的组织特异性表达 | 第48页 |
| 2.2 干旱胁迫条件下木薯CC类GRX基因的表达分析 | 第48-49页 |
| 2.3 MeGRX058和MeGRX785基因结构分析及基因的克隆 | 第49-50页 |
| 2.4 MeGRX058和MeGRX785蛋白的理化性质及二级结构分析 | 第50-51页 |
| 2.5 干旱胁迫对转基因木薯MeGRX058和MeGRX785的影响 | 第51-53页 |
| 2.6 木薯MeGRX058和MeGRX785互作蛋白的筛选 | 第53页 |
| 2.7 大肠杆菌表达产物的SDS-PAGE检测及目的蛋白的WB鉴定 | 第53-55页 |
| 2.8 重组酵母菌表达产物的SDS-PAGE检测及目的蛋白的WB鉴定 | 第55页 |
| 2.9 木薯叶片表达蛋白的SDS-PAGE检测及目的蛋白的WB鉴定 | 第55-57页 |
| 3 讨论 | 第57-58页 |
| 4 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 附录 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
