| 摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 插图及附表清单 | 第20-22页 |
| 缩略词 | 第22-23页 |
| 第一章 绪论 | 第23-63页 |
| 1.1 甲醇/乙醇对植物生长和光合作用的影响 | 第23-29页 |
| 1.1.1 甲醇/乙醇在植物体内的产生和代谢 | 第23-24页 |
| 1.1.2 外源甲醇/乙醇刺激与植物生长 | 第24-26页 |
| 1.1.3 外源甲醇/乙醇刺激与植物繁殖 | 第26-27页 |
| 1.1.4 外源甲醇/乙醇刺激与植物抗逆 | 第27-28页 |
| 1.1.5 外源甲醇/乙醇刺激与植物光合作用 | 第28-29页 |
| 1.2 甲醇/乙醇刺激影响植物生长和光合作用机理研究 | 第29-36页 |
| 1.2.1 甲醇/乙醇刺激植物生长和光合作用的生理机制 | 第29-31页 |
| 1.2.2 甲醇/乙醇刺激植物生长和光合作用的分子机理 | 第31-33页 |
| 1.2.3 模式植物响应甲醇/乙醇刺激的分子机理研究 | 第33-36页 |
| 1.3 气孔运动的调控机理及其信号传导途径研究进展 | 第36-48页 |
| 1.3.1 气孔运动的调控机理 | 第36-43页 |
| 1.3.2 气孔运动的信号转导途径 | 第43-48页 |
| 1.4 环境刺激影响质膜H~+-ATPase作用机理的研究进展 | 第48-51页 |
| 1.4.1 质膜H~+-ATPase的结构及生化特性 | 第48页 |
| 1.4.2 质膜H~+-ATP酶的生理功能及其调控 | 第48-50页 |
| 1.4.3 质膜H~+-ATP酶在植物响应环境刺激中的作用 | 第50-51页 |
| 1.5 环境刺激影响14-3-3蛋白作用机理的研究进展 | 第51-55页 |
| 1.5.1 植物14-3-3蛋白的结构及生化特性 | 第51-52页 |
| 1.5.2 植物14-3-3蛋白的生理功能及其表达调控 | 第52-53页 |
| 1.5.3 植物14-3-3蛋白在植物响应环境刺激中的作用机制和信号转导 | 第53-55页 |
| 1.6 植物Ca~(2+)/CaM作用机理的研究进展 | 第55-61页 |
| 1.6.1 Ca~(2+)在植物细胞中的分布 | 第56-57页 |
| 1.6.2 CaM的基本结构 | 第57-58页 |
| 1.6.3 CaM在植物细胞中与抗氧化防御及光合作用的联系 | 第58-61页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第61-63页 |
| 第二章 喷施甲醇/乙醇对油菜生长和光合特性的影响 | 第63-77页 |
| 2.1 材料与方法 | 第64-67页 |
| 2.1.1 材料培养与处理 | 第64页 |
| 2.1.2 油菜幼苗生长参数的测定 | 第64页 |
| 2.1.3 油菜叶片的光合参数和气孔开度测定 | 第64页 |
| 2.1.4 油菜叶片叶绿素含量测定 | 第64-65页 |
| 2.1.5 油菜叶片丙二醛、可溶性总糖和可溶性总蛋白含量测定 | 第65-66页 |
| 2.1.6 油菜叶片过氧化氢含量测定 | 第66-67页 |
| 2.1.7 油莱叶片抗氧化酶活性测定 | 第67页 |
| 2.1.8 试验数据的统计分析 | 第67页 |
| 2.2 结果 | 第67-75页 |
| 2.2.1 不同浓度甲醇和乙醇处理对油菜生长的影响 | 第67-70页 |
| 2.2.2 不同品种油菜生长对甲醇/乙醇刺激的响应 | 第70-73页 |
| 2.2.3 油菜生长响应甲醇/乙醇刺激的生理生化分析 | 第73-75页 |
| 2.3 讨论 | 第75-77页 |
| 第三章 应用cDNA芯片分析鉴定油菜喷施甲醇/乙醇差异表达基因 | 第77-116页 |
| 3.1 材料与方法 | 第78-83页 |
| 3.1.1 材料培养与处理 | 第78页 |
| 3.1.2 cDNA芯片杂交用总RNA样品的制备 | 第78页 |
| 3.1.3 cDNA芯片数据分析 | 第78-79页 |
| 3.1.4 RT-PCR分析 | 第79-81页 |
| 3.1.5 质膜蛋白的提取 | 第81-82页 |
| 3.1.6 质膜H~+-ATPase活性的测定 | 第82页 |
| 3.1.7 质膜H~+泵活性的测定 | 第82页 |
| 3.1.8 Western分析和免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第82-83页 |
| 3.2 结果 | 第83-110页 |
| 3.2.1 油菜中响应5%甲醇刺激的表达差异基因 | 第83-93页 |
| 3.2.2 油菜中响应5%乙醇刺激的表达差异基因 | 第93-108页 |
| 3.2.3 5%甲醇/乙醇喷施油菜叶片对质膜H~+-ATPase与14-3-3蛋白相互作用的影响 | 第108-109页 |
| 3.2.4 5%甲醇/乙醇喷施油菜叶片对质膜H~+-ATPase活性和质膜氢泵活性的影响 | 第109-110页 |
| 3.3 讨论 | 第110-116页 |
| 3.3.1 甲醇和乙醇诱导上调表达的转录和信号传导相关基因 | 第110-111页 |
| 3.3.2 14-3-3蛋白和质膜H~+-ATPase对甲醇和乙醇刺激的应答 | 第111-112页 |
| 3.3.3 甲醇/乙醇刺激光合作用相关基因的上调表达 | 第112-113页 |
| 3.3.4 植物生长和发育相关基因的上调表达 | 第113-114页 |
| 3.3.5 胁迫相关基因的上调表达 | 第114页 |
| 3.3.6 甲醇和乙醇调控基因表达效果的差异 | 第114-116页 |
| 第四章 H_2O_2在油菜气孔运动响应甲醇/乙醇刺激中的作用 | 第116-128页 |
| 4.1 材料与方法 | 第116-118页 |
| 4.1.1 材料培养与处理 | 第116-117页 |
| 4.1.2 光合参数和气孔运动参数测定 | 第117页 |
| 4.1.3 叶片过氧化氢含量测定 | 第117页 |
| 4.1.4 保卫细胞内H_2O_2含量测定 | 第117页 |
| 4.1.5 质膜蛋白的提取 | 第117-118页 |
| 4.1.6 质膜H~+-ATPase活性的测定 | 第118页 |
| 4.1.7 质膜H~+泵活性的测定 | 第118页 |
| 4.1.8 Western分析和免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第118页 |
| 4.1.9 数据处理与分析 | 第118页 |
| 4.2 结果 | 第118-125页 |
| 4.2.1 不同浓度外源H_2O_2处理对油菜光合作用和气孔开度的影响 | 第118-120页 |
| 4.2.2 外源H_2O_2和甲醇/乙醇联合使用对油菜光合作用和气孔开度的影响 | 第120页 |
| 4.2.3 外源H_2O_2和甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片内过氧化氢含量的影响 | 第120-122页 |
| 4.2.4 外源H_2O_2和甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片保卫细胞过氧化氢含量的影响 | 第122-123页 |
| 4.2.5 外源H_2O_2和甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片质膜H~+-ATPase与14-3-3蛋白相互作用的影响 | 第123-124页 |
| 4.2.6 外源H_2O_2和甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片质膜H~+-ATPase活性和质膜氢泵活性的影响 | 第124-125页 |
| 4.3 讨论 | 第125-128页 |
| 第五章 ABA在油菜气孔运动响应甲醇/乙醇刺激中的作用 | 第128-141页 |
| 5.1 材料与方法 | 第129-130页 |
| 5.1.1 材料培养与处理 | 第129页 |
| 5.1.2 光合参数和气孔运动参数测定 | 第129页 |
| 5.1.3 叶片过氧化氢含量测定 | 第129页 |
| 5.1.4 保卫细胞内H_2O_2含量测定 | 第129页 |
| 5.1.5 质膜蛋白的提取 | 第129-130页 |
| 5.1.6 质膜H~+-ATPase活性的测定 | 第130页 |
| 5.1.7 质膜H~+泵活性的测定 | 第130页 |
| 5.1.8 Western分析和免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第130页 |
| 5.1.9 数据处理与分析 | 第130页 |
| 5.2 结果 | 第130-138页 |
| 5.2.1 不同浓度外源ABA处理对油菜光合作用和气孔开度的影响 | 第130-132页 |
| 5.2.2 外源ABA和甲醇/乙醇联合使用对油菜光合作用和气孔开度的影响 | 第132-134页 |
| 5.2.3. 外源ABA和甲醇/乙醇联合使用对叶片内过氧化氢含量的影响 | 第134-135页 |
| 5.2.4 外源ABA和甲醇/乙醇联合使用对保卫细胞过氧化氢含量的影响 | 第135-136页 |
| 5.2.5 外源ABA和甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片质膜H~+-ATPase与14-3-3蛋白相互作用的影响 | 第136-137页 |
| 5.2.6 外源ABA和甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片质膜H+-ATPase活性和质膜氢栗活性的影响 | 第137-138页 |
| 5.3 讨论 | 第138-141页 |
| 第六章 质膜H~+-ATPase在油菜叶片气孔运动响应甲醇/乙醇刺激中的作用 | 第141-157页 |
| 6.1 材料与方法 | 第142-144页 |
| 6.1.1 材料培养与处理 | 第142页 |
| 6.1.2 油菜叶片光合参数和气孔运动的测定 | 第142页 |
| 6.1.3 油菜叶片过氧化氢含量测定 | 第142-143页 |
| 6.1.4 油菜叶表皮保卫细胞内H_2O_2含量测定 | 第143页 |
| 6.1.5 油菜叶片质膜蛋白的提取 | 第143页 |
| 6.1.6 油菜叶片质膜H~+-ATPase活性的测定 | 第143页 |
| 6.1.7 油菜叶片质膜H~+泵活性的测定 | 第143页 |
| 6.1.8 Western分析和免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第143-144页 |
| 6.1.9 数据处理与分析 | 第144页 |
| 6.2 结果 | 第144-155页 |
| 6.2.1 不同浓度VA和AMP对油菜叶片光合作用和气孔开度的影响 | 第144-146页 |
| 6.2.2 外源VA和AMP与甲醇/乙醇联合使用对油菜光合作用和气孔开度的影响 | 第146-149页 |
| 6.2.3 外源VA和AMP与甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片过氧化氢含量的影响 | 第149-150页 |
| 6.2.4 外源VA和AMP与甲醇/乙醇联合处理对保卫细胞过氧化氢含量的影响 | 第150-152页 |
| 6.2.5 外源VA和AMP与甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片质膜H~+-ATPase与14-3-3蛋白互作水平的影响 | 第152-153页 |
| 6.2.6 外源VA和AMP与甲醇/乙醇联合使用对油菜叶片质膜H+-ATPase活性及氢泉活性的影响 | 第153-155页 |
| 6.3 讨论 | 第155-157页 |
| 第七章 14-3-3蛋白和质膜H~+-ATPase表达改变转基因烟草叶片气孔响应甲醇和乙醇刺激的生理生化特性分析 | 第157-166页 |
| 7.1 材料与方法 | 第157-158页 |
| 7.1.1 材料培养与处理 | 第157-158页 |
| 7.1.2 烟草叶片光合参数和气孔开度测定 | 第158页 |
| 7.1.3 烟草叶片质膜蛋白的提取 | 第158页 |
| 7.1.4 Western分析和免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第158页 |
| 7.1.5 烟草叶片质膜H~+-ATPase活性的测定 | 第158页 |
| 7.1.6 烟草叶片质膜H~+泵活性的测定 | 第158页 |
| 7.1.7 数据处理与分析 | 第158页 |
| 7.2 结果 | 第158-164页 |
| 7.2.1 甲醇/乙醇处理对转基因烟草光合参数的影响 | 第158-161页 |
| 7.2.2 甲醇/乙醇处理对转基因烟草质膜H~+-ATPas与14-3-3蛋白相互作用的影响 | 第161-162页 |
| 7.2.3 甲醇/乙醇处理对烟草叶片质膜H~+-ATPase活性及氢泵活性的影响 | 第162-164页 |
| 7.3 讨论 | 第164-166页 |
| 第八章 钙调素在油菜叶片气孔运动响应甲醇/乙醇刺激中的作用 | 第166-181页 |
| 8.1 材料与方法 | 第167-168页 |
| 8.1.1 材料培养 | 第167页 |
| 8.1.2 油菜叶片光合参数和气孔开度测定 | 第167页 |
| 8.1.3 油菜叶片过氧化氢含量测定 | 第167页 |
| 8.1.4 油菜叶片抗氧化酶活性测定 | 第167-168页 |
| 8.1.5 油菜叶片CaM基因表达水平的测定 | 第168页 |
| 8.1.6 数据处理与分析 | 第168页 |
| 8.2 结果 | 第168-178页 |
| 8.2.1 不同Ca~(2+)/CaM抑制剂/拮抗剂与甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片光合参数和气孔开度的影响 | 第168-173页 |
| 8.2.2 不同Ca~(2+)/CaM抑制剂/拮抗剂与甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片过氧化氢含量的影响 | 第173-174页 |
| 8.2.3 不同Ca~(2+)/CaM抑制剂/拮抗剂与甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片内抗氧化酶活性的影响 | 第174-177页 |
| 8.2.4 不同Ca~(2+)/CaM抑制剂/拮抗剂与甲醇/乙醇联合处理对油菜叶片CaM表达水平的影响 | 第177-178页 |
| 8.3 讨论 | 第178-181页 |
| 第九章 结论与展望 | 第181-184页 |
| 参考文献 | 第184-208页 |
| 致谢 | 第208-209页 |
| 附录A | 第209-210页 |
